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VitroGel™是一种即用型、无外源性(Xeno-Free)的多糖水凝胶体系,可模拟天然的细胞外基质(extracellularmatrix,ECM)环境。VitroGel™使用方便操作简单,只需与细胞培养基混合即可转变为可调的水凝胶基质。VitroGel™优点众多,应用广泛,有效的弥补了体内外研究的鸿沟。本文主要为大家详细介绍VitroGel™。 |
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☰ 工作原理 | |||||||||||||
20分钟快速成胶(包括10-15分钟水凝胶稳定时间)。
VitroGel™与细胞培养基中的离子(如Ga2+或Na+)相互作用,室温稳定15分钟即可形成水凝胶。成胶后在水凝胶表面覆盖一层培养基,可进一步促进水凝胶交联形成较硬的水凝胶。 |
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☰ 产品特点 | |||||||||||||
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☰ VitroGel™3D培养的优势 | |||||||||||||
与其他3D培养方式相比VitroGel 3D集众多优点于一身(详见下表) ![]() |
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☰ 产品应用 | |||||||||||||
VitroGel™有两种类型:VitroGel 3D和VitroGel 3D-RGD;它们的使用方法及产品特点相同,不同点在于VitroGel 3D多用于悬浮细胞的培养,VitroGel 3D-RGD因在水凝胶中添加了整合素的配基RGD肽,因此更有利于贴壁细胞的培养。 VitroGel™可应用于❶3D细胞培养、❷体内注射、❸细胞侵袭&迁移实验、❹细胞成球实验、❺药物筛选、❻干细胞培养、2D细胞培养等诸多方面,下面来详细介绍一下。 |
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01/ 3D细胞培养 | |||||||||||||
● VitroGel 3D VitroGel 3D培养的Betalox 5细胞优于普通2D培养,更易粘附形成细胞簇或成球,细胞生存能力增强。
图1 数据来源:The Well ● VitroGel 3D长期培养优于Matrigel B35细胞在分化后第3天开始扩散并形成神经元样网络结构,从细胞存活、培养扩散和形态学分析来看,第3天在VitroGel 3D和Matrigel 3D中培养的B35细胞效果相当。随着培养天数的增加,到第七天VitroGel 3D中培养的B35细胞有自组织形成3D细胞簇的倾向,此时Matrigel中培养的B35细胞仍为分散的网络结构;第14天在Matrigel中培养的细胞存活率急剧下降,大多数细胞分离,神经突回缩, VitroGel 3D中培养的细胞则无此现象。到第21天,Matrigel中培养的绝大多数细胞消失,VitroGel 3D中培养的细胞簇早已嵌入到水凝胶中,虽然细胞簇间的细胞数很少,但细胞无凋亡现象。
![]() 图2:神经元 (B35) 细胞在VitroGel 3D与Matrigel中长期培养的结果比较 (β- III -微管蛋白(绿色)标染细胞骨架,用DAPI(蓝色)标染细胞核。) 数据来源:The Well ● VitroGel 3D-RGD 在VitroGel RGD中生长的OP9细胞更易形成细胞网络结构。 |
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图3:VitroGel RGD中培养第7天10x (左)
图4: VitroGel RGD中培养第7天20x (右)
数据来源:The Well |
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02/ 体内注射 | |||||||||||||
● VitroGel-3D-RGD VitroGel 3D-RGD形成的软水凝胶,无任何外源性动物成分的引入,可作为良好的细胞移植支架。 ![]() 图5:VitroGel-3D-RGD与NPMSC(髓核间充质干细胞)混合后,注射入动物体内示意图 VitroGel3D-RGD作为移植支架时提供的有利环境,能够很好的维持移植细胞(NPMSC)的存活能力。移植的NPMSC均用荧光探针标记,使用活体成像技术(IVIS)检测感兴趣区域(ROI)的荧光值,以此分析移植细胞的存活率。移植第一天H-gel+cell组与单独cell组相比无差异,移植第三十天时H-gel+cell组的存活率明显高于cell组。
![]() 图6:移植第1天与第30天,细胞存活率比较
相关文献: |
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03/ 体外评估细胞的迁移与生长能力 | |||||||||||||
● VitroGel 3D-RGD 相关文献:
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04/ 前列腺癌细胞系成球培养 | |||||||||||||
● VitroGel 3D-RGD 相关文献: |
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05/ 细胞毒检测实验 | |||||||||||||
● VitroGel 3D-RGD 相关文献: Thanindratarn. P, et al.(2019).Establishment and Characterization of a Recurrent Osteosarcoma Cell Line: OSA 1777. Journal of Orthopaedic Research.(点击查看详细内容) |
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06/ 牙根尖乳头干细胞(SCAP)培养 |
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● VitroGel 3D 相关文献: Xiao. M, et al. (2019). Synergistic effects of stromal cell-derived factor-1α and bone morphogenetic protein-2 treatment on odontogenic differentiation of human stem cells from apical papilla cultured in the VitroGel 3D system. Cell and Tissue Research, 378(2), 207–220.(点击查看详细内容) |
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VitroGel™相关产品列表 | |||||||||||||
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