胞外Cys残基对对于HPCA1感应eH2O2必不可少
HPCA1在其胞外区域具有2个特殊的Cys残基对,为了探究这2个残基对的作用,研究人员使用Cys突变的HPCA1对hpca1突变体进行互补重组,对重组后的样本使用4mM H2O2处理。
Ca2+成像结果显示,Cys突变的HPCA1无法恢复hpca1-2突变体的表型,说明胞外Cys残基对对于感应eH2O2是必不可少的。
图5 | Cys突变的HPCA1 × hpca1-2突变体中,Ca2+成像发光信号大幅度减弱,即Cys突变的HPCA1无法恢复hpca1-2突变体的表型。

扩展数据图6:
对照实验:将图5e中使用的各组拟南芥幼苗,用含有0.9 M CaCl2和10%(v / v)乙醇的溶液处理(刺激水母发光蛋白发光),对剩余的发光总量进行成像。对于所有基因型,检测到相似的发光强度。说明图5e中Cys突变的HPCA1 × hpca1-2突变体的发光信号大幅度减弱与其水母发光蛋白的含量无关,而是由于其对H2O2的响应存在缺陷而导致。
基于水母发光蛋白生物发光的Ca2+成像过程由配备了不透光暗箱的超低温背照式CCD相机(ChemiPro HT系统)以及配备了H-800不透光可控环境箱的新型Lumazone系统((Pylon1300B)完成。将液氮自动填充系统连接到成像系统以提供恒定的冷却温度。CCD相机由WinView软件控制,并使用MetaMorph 6.3等软件进行生物发光图像的分析。
注:ChemiPro HT系统、Lumazone Pylon1300B系统、液氮自动填充系统以及WinView控制软件均由Roper Scientific以及Bio-One Scientific Instrument(博益科学仪器)提供。
H-800不透光可控环境箱由Bio-One Scientific Instrument(博益科学仪器)独家研发,适用于植物活体成像过程中对于实验植株的培养与拍摄,可控制温度和光照强度,提供稳定均一的生长和实验条件。
MetaMorph 6.3(Molecular Devices, USA)等图像分析软件由Bio-One Scientific Instrument(博益科学仪器)提供。
设备使用期间,由北京博益伟业仪器有限公司负责提供钙离子成像、图像分析软件、环境控制培养箱、CCD液氮制冷装置等相关部分的技术支持和售后服务工作。
除了采用基于水母发光蛋白生物发光的Ca2 +成像技术进行相关研究外,研究人员在实验过程中还采用了基于黄色Cameleon 3.6(YC3.6)的Ca2+成像方法,用以评估hpca1突变体中保卫细胞eH2O2 Ca2+信号传导受损的情况。实验方法描述如下:
将hpca1突变体杂交到组成型表达Ca2 +传感器YC3.6的野生型植株中并进行Ca2 +成像,对产生的五个以上的纯和品系进行分析。之后,将来自三周龄植株的莲座叶表皮置于含有100μM CaCl2、5 mM KCl和10 mM MES-Tris(pH 6.15)的微孔室中,在光照下放置2.5 h。
使用配备有两个滤光轮(Lambda 10-3 / 10-2)和低温CMOS或CCD相机(Prime sCMOS / CoolSNAPfx)的荧光显微镜进行比率式Ca2 +成像。在440 nm处进行激发,并使用MetaFluor软件(Molecular Devices)收集发射比率为F535 nm / F485 nm的图像。
考虑到eH2O2触发了保卫细胞中[Ca2 +] i的增加和气孔的关闭,实际检测时,确实可以在hpca1突变体中观察到保卫细胞内的eH2O2 Ca2 +信号降低,并且响应eH2O2的气孔关闭数量减少。
这些结果表明,在hpca1突变体的保卫细胞中,eH2O2所诱导的Ca2 +信号通路存在明显缺陷。

图6 | a:在加入2 mM H2O2之前的20秒和之后的140秒,每4秒钟拍摄一次表达YC3.6的植株中表皮条的比例图像。b:根据a中实验的时间进程,对[Ca2 +] i进行量化分析。
注:低温Prime sCMOS相机、CoolSNAPfx CCD相机(Photometrics, USA)和MetaFluor软件(Molecular Devices, USA)均由Bio-OneScientific Instrument(博益科学仪器)提供。
设备使用期间,由北京博益伟业仪器有限公司负责提供相应的技术支持和售后服务工作。
总结:
作为生物体内一种重要的信号传导介质,Ca2+具有独特的生物学功能,参与多种细胞对于外部刺激的感应以及内部分子事件的调控过程。裴真明教授课题组的研究人员,采用基于生物发光蛋白(水母发光蛋白)以及荧光蛋白钙指示剂(YC3.6)的Ca2+成像方法,完成了在发现植物细胞表面过氧化氢感受器HPCA1过程中所涉及的多项探究任务,如利用正向遗传筛选法分离得到突变体植物、验证目标植株、目标基因和目标蛋白的特异性等。成像方法的应用,使得结论的得出及证明过程更加简便、高效和直观。因此,我们特意梳理出上述涉及Ca2+成像的实验方法与大家做交流,希望从事相关植物学研究的老师们可以对这些技术方法有更进一步的了解,对于今后开展相关研究有所助益。
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