细胞电转染实验效率低的原因可能涉及多个方面，具体如下：

首先，细胞的状态是影响转染效率的关键因素。如果细胞密度过低或过高，都可能对转染效率产生负面影响。细胞密度过低时，细胞过于稀疏，转染试剂难以充分接触细胞；而细胞密度过高时，转染试剂与细胞的接触和吸收可能受阻。此外，如果细胞处于应激状态或非常规生长状态，如细胞凋亡或细胞周期静止期，它们的转染效率也可能会受到影响。

其次，转染试剂的选择和适配性也至关重要。不同类型的细胞需要使用不同的转染试剂，选择不合适的转染试剂可能导致效率低下。同时，转染试剂与细胞的适配性不佳也可能影响转染效率，试剂无法很好地与细胞结合，从而影响转染效果。

再者，转染的DNA或RNA的质量和浓度也会影响转染效率。如果质粒DNA的纯度不够高，其中可能含有杂质或其他DNA，这些杂质可能干扰转染试剂的作用或对细胞产生毒性，导致转染效率降低。同样，如果质粒DNA的量不足，转染试剂与细胞的接触可能不充分，从而影响转染效率。

此外，实验条件和操作方法的合规性也是影响转染效率的重要因素。如果实验条件不符合标准，或者操作方法不规范，都可能导致转染效率下降。

综上所述，细胞电转染实验效率低的原因多种多样，可能涉及细胞状态、转染试剂的选择和适配性、转染的DNA或RNA的质量和浓度，以及实验条件和操作方法的合规性等多个方面。为了提高转染效率，需要综合考虑这些因素，并采取相应的措施进行优化。

改进建议

1. 场强要合适

适当的场地强度对于电转染试验非常重要。场地强度不宜过高，过高会增加细胞死亡率；不能太低。太低不能增加膜的渗透性或在膜上形成小孔。不同的细胞系有不同的最佳场强值，所转染细胞系的最佳场强值应在试验前确定。

2. 细胞状态要好

在大多数生长期(15代以内，传代后2d)，一般选择用于电转的细胞。由于大多数生长期细胞分裂旺盛，表面结构致密性比稳定期细胞差。电转后，细胞膜恢复力强，有丝分裂期细胞更容易接受外源DNA.

3. 质粒质量要好

首先要选择纯度高的质粒，DNA／RNA应该是超纯的(A260／A280>1．第二，不应含有内毒素，质粒应溶于双蒸水而非TE缓冲溶液。另外，DNA浓度不宜过高。

4. 选择合适的电转染试剂

电击会对细胞造成一定程度的伤害。应注意转染试剂的选择。应选择威尼德生物科技等具有细胞膜修复成分的电转染试剂。-E，可以最大限度地减少电击对细胞的伤害。