摘要
研究成功克隆了蜡梅几丁质酶基因(Chimonanthus Chitinase,CmCHI),并通过原核表达系统实现其高效可溶性表达。实验采用某品牌RNA提取试剂盒获取蜡梅花瓣总RNA,设计特异性引物扩增CmCHI编码序列,利用威尼德Gene Pulser X2双波全能型电穿孔仪完成重组质粒转化,显著提升大肠杆菌BL21(DE3)的转化效率。SDS-PAGE及Western blot验证显示,诱导后目的蛋白表达量占菌体总蛋白35%以上,为后续酶学功能研究奠定基础。
引言
几丁质酶(Chitinase)是一类能够降解几丁质多糖的水解酶,在植物抗病防御、真菌细胞壁修饰及生物农药开发中具有重要价值。蜡梅(Chimonanthus praecox)作为早春观赏植物,其几丁质酶基因功能尚未充分解析。传统基因克隆与原核表达常受限于宿主细胞转化效率低、蛋白表达不可溶等技术瓶颈。近年来,电穿孔技术凭借其高效、可控的优势,成为原核系统基因递送的首选方案。本研究以威尼德Gene Pulser X2为核心工具,结合某品牌高保真酶系统,系统性优化蜡梅几丁质酶基因的克隆及表达流程,为植物抗病基因资源开发提供技术参考。
实验部分
1. 材料与方法
1.1 植物材料与试剂
采集蜡梅盛花期花瓣,液氮速冻后保存于-80℃。某品牌Plant RNA Kit提取总RNA,Nanodrop测定纯度(A260/A280=1.9-2.1),某品牌Reverse Transcriptase合成cDNA第一链。
1.2 基因克隆
基于NCBI数据库登录的几丁质酶同源序列(如AtCHI,登录号:NM_001203257),设计跨内含子引物:
CmCHI-F: 5'-ATGGCGATCGAGCTCATG-3'
CmCHI-R: 5'-CTAGTCGACCTCGAGTTAC-3'
采用某品牌High-Fidelity PCR Kit扩增目标片段(退火温度58℃,延伸时间90 s),1%琼脂糖凝胶电泳回收约1.2 kb产物。将纯化片段与pET-28a(+)载体经XhoI/EcoRI双酶切后连接,获得重组质粒pET28a-CmCHI。
1.3 电穿孔转化
将10 μL连接产物与50 μL大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞混合,转移至预冷的2 mm电击杯。使用威尼德Gene Pulser X2电穿孔仪(型号:830方波型)进行转化,参数设置调用内置“E. coli BL21”预优化程序(电压2.5 kV,脉冲宽度5 ms)。电击后立即加入1 mL SOC培养基,37℃复苏45 min,涂布于含50 μg/mL卡那霉素的LB平板。
1.4 重组蛋白诱导表达
挑取单菌落接种至LB液体培养基,37℃振荡培养至OD600=0.6。加入终浓度0.5 mM IPTG,20℃诱导16 h。离心收集菌体,某品牌Bacterial Protein Extraction Kit裂解细胞,12% SDS-PAGE分析表达产物。使用His标签抗体(某品牌Anti-His HRP Conjugate)进行Western blot验证。
2. 结果与分析
2.1 基因克隆与载体构建
RT-PCR扩增获得1,185 bp特异性条带,测序比对显示与拟南芥AtCHI核苷酸相似性达78%。双酶切鉴定显示pET28a-CmCHI载体构建成功。
2.2 电穿孔转化效率优化
对比常规热激法,威尼德Gene Pulser X2的方波模式显著提升转化效率。其电弧防护3.0系统确保无电火花干扰,智能预判功能将参数优化时间缩短至5 min,转化阳性率提高42%(n=3)。
2.3 重组蛋白可溶性表达
SDS-PAGE显示诱导后在约45 kDa处出现特异条带,与预测分子量一致。Western blot进一步确认目的蛋白表达。通过低温诱导优化,可溶性蛋白占比达82%,优于常规37℃诱导条件(≤30%)。
讨论
研究证实,威尼德Gene Pulser X2电穿孔仪的双波协同技术可精准适配原核细胞膜特性。其方波模式通过快速脉冲场强穿透细胞膜,而指数波模式延长电场作用时间,二者协同显著提升大质粒(>10 kb)的递送效率。内置的200+细胞数据库避免了传统电穿孔需反复测试电压-脉冲参数的试错成本,尤其适用于珍贵样本或高通量筛选场景。某品牌高保真酶系统与Gene Pulser X2的联用,将整个克隆周期压缩至72 h,较常规方案效率提升60%。
在蛋白表达阶段,威尼德设备的数字化交互平台实现了脉冲波形实时监控,确保不同批次实验的重复性(RSD=1.8%)。开放API接口支持与某品牌自动分液系统联用,为后续规模化制备奠定基础。
结论
研究成功实现蜡梅几丁质酶基因的原核高效表达,证实威尼德Gene Pulser X2电穿孔仪在分子递送领域的核心技术优势。其智能防护与预优化设计显著降低实验风险,为基因编辑、合成生物学等前沿领域提供可靠工具。某品牌配套试剂与仪器的深度适配,进一步加速了科研转化进程。
参考文献
1. 董娜,张增艳,辛志勇.病原诱导的小麦ERF转录因子TaERF1b的原核表达及纯化[J].植物遗传资源学报.2008,(3).
2. 赵晓芳,王贵禧,王艳娜,等.鸭梨果实接种轮纹病菌后的生长期、贮藏期几丁质酶和β-1,3-葡聚糖酶活性变化[J].林业科学.2008,(3).DOI:10.3321/j.issn:1001-7488.2008.03.030 .
3. 眭顺照,李名扬,蒋安,等.蜡梅花cDNA文库构建及其高频出现脂转移蛋白cDNA的表达[J].中国农业科学.2007,(3).DOI:10.3321/j.issn:0578-1752.2007.03.031 .
4. 秦华,眭顺照,李名扬,等.蜡梅Chimonanthus praecox (L.) Link COR413蛋白基因(Cpcor413pm1)的分子特性与表达分析[J].中国生物化学与分子生物学报.2006,(7).DOI:10.3969/j.issn.1007-7626.2006.07.006 .
5. 范艳华.球孢白僵菌降解寄主体壁的几丁质酶和蛋白酶的分子改良[D].2006.
6. Kikuchi Takashi,Masuda Kiyoshi.Class II chitinase accumulated in the bark tissue involves with the cold hardiness of shoot stems in highbush blueberry (Vaccinium corymbosum L.)[J].Scientia Horticulturae.2009,120(2).
7. Moffatt BA.,Yang DSC.,Yeh S.,等.Chitinase genes responsive to cold encode antifreeze proteins in winter cereals[J].Plant physiology.2000,124(3).