特别提示：包括鸡败血支原体荧光定量PCR试剂盒(探针法)在内，本公司的所有产品仅可用于科研实验，严禁用于临床医疗及其他非科研用途！

产品名称：鸡败血支原体荧光定量PCR试剂盒(探针法)
英文名称：Mycoplasma galliscepticum qPCR Kit(Probe Method)
产品货号：BTN15-74070
产品规格：50次



根据您的关注的鸡败血支原体荧光定量PCR试剂盒(探针法)，您可能还对以下产品有需求：


SYA421 非洲猪瘟病毒(ASFV)单重荧光PCR检测试剂盒 48次/盒|96次/盒
BTN15-90400 十二指肠钩口线虫荧光定量PCR试剂盒(探针法) 50次
BTN14-36510 平尾毛细线虫荧光定量PCR试剂盒(染料法) 50次
BTN13-36520 捻转毛细线虫PCR试剂盒 50次
BTN15-31100 漏斗状带绦虫荧光定量PCR试剂盒(探针法) 50次
BTN13-26810 贝氏隐孢子虫PCR试剂盒 50次
BTN14-24400 虾肝肠微胞虫(EHP)荧光定量PCR试剂盒(染料法) 50次
BTN13-43410 沿岸单孢子虫PCR试剂盒 50次

关注鸡败血支原体荧光定量PCR试剂盒(探针法)，的同时，为您推荐更多您可能感兴趣的产品：



名称：禽腺病毒单重荧光PCR检测试剂盒
货号：SYA391
规格：48次/盒
一、简介：
本试剂盒用一对禽腺病毒特异性引物，结合一条特异性探针，用荧光PCR技术对禽腺病毒DNA进行体外扩增检测，用于临床上对可疑感染动物的病原学诊断。

二、用途：
该试剂盒适合于检测呼吸道分泌物棉拭子(感染I群禽腺病毒的鸡、火鸡、鹅、鹌鹑)、卵巢、输卵管、卵泡、子宫和输卵管粘膜组织、泄殖腔拭子(感染II、III群禽腺病毒的鸡、鸭)等样本中的禽腺病毒(AADV)，用于禽腺病毒(AADV)感染的辅助诊断及流行病学调查，其检测结果仅供参考。

三、试剂盒组成：(48T)
组份 数量 规格
AADV反应液(AADV-qPCR MIX) 1管 720μL/管
核酸提取液(DNA Extraction) 2管 1.5mL/管
阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
AADV阳性对照(AADVPTC) 1管 50μL/管

四、储存条件及有效期：
本试剂盒于-20℃以下保存，有效期为6个月。

五、荧光PCR仪器适用范围：
ABI系列，Roche系列等荧光定量PCR检测仪等。

六、样品的采集与DNA提取
6.1 样品的采集
病死禽取卵巢、输卵管、卵泡、子宫和输卵管粘膜组织；活鸡取呼吸道拭子或泄殖腔拭子，放于1ml 50％甘油生理盐水中。
6.2 样品前处理
组织样品：每份组织分别从3个不同的位置称取样品约1g，手术剪剪碎混匀后取0.05g于研磨器中研磨，加入1.5mL生理盐水后继续研磨，待匀浆后转至1.5mL灭菌离心管中，8000rpm离心2min，取上清液100μL于1.5mL灭菌离心管中；泄殖腔拭子直接取100μL提取。
6.3 DNA提取
可采用PCR试剂盒配备的DNA抽提液，按以下说明进行DNA核酸的粗提。也可采购北京百奥莱博技有限公司生产的DNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的商业化产品，并按照相应试剂盒说明进行操作。
6.31 纯培养物：取培养物50μL与50μL DNA抽提液充分混匀，100℃恒温10min，13000rpm离心3min，取上清5μL进行PCR反应。
6.3.2 粪便样品：挑取米粒大小粪便于灭菌离心管中，加入0.5mL生理盐水，振荡混匀，取50μL样品，加入50μL DNA抽提液充分混匀，100℃恒温10min，13000rpm离心3min取上清5μL进行PCR反应。
6.3.3 组织研磨液、拭子、血清、血浆及其他液体标本：取处理好的标本50μL，加入50μl DNA抽提液充分混匀，100℃恒温10min，13000rpm离心3min取上清5μL进行PCR反应。
 注：阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取)，直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高，建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

七、检测步骤
7.1 试剂的准备
从试剂盒中取出荧光PCR反应液(AADV-qPCR MIX)，冰上融化并振荡混匀后，10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下表：
试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
荧光PCR反应液 15µL N×15µL
计算好各试剂的使用量，加入一适当体积洁净离心管中，充分混匀，10000rpm离心10s，向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL荧光PCR反应液，向每管中加入处理后样品或阴性对照(NTC)和阳性对照(AADV-PTC)5μL，10000rpm瞬时离心10秒。
7.2 qPCR反应条件
将各反应管放入定量PCR仪器的反应槽内。
推荐循环条件:
1循环 50℃ for 2 min
预变性 1循环 95℃ for 10 min
PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
60℃ for 60 sec
在60℃ 延伸时收集荧光信号 。报告基团：设置为FAM。淬灭基团：NONE，请勿选择ROX 参比荧光。

八、结果分析
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
8.2 试验成立判定
（1） 阴性对照(NTC)： 不应产生任何的扩增曲线。
（2） 阳性对照(AADV-PTC)：均产生扩增曲线。
（3） 以上条件应同时满足 ，否则，此次试验视为无效。
8.3 结果判定
（1） 在试验成立的条件下，Ct值≤35，且曲线有明显的指数增长曲线，表明AADV核酸阳性。
（2） Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明AADV核酸阴性。
（3） 如果Ct值＞35，判为可疑样品。对于可疑样品，先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线，则为可疑阳性，否则判为阴性。
（4） 对于可疑阳性样品，重新抽提核酸，再次进行AADV 检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明AADV核酸阳性；否则判为样本阴性。

九、注意事项：
（1） 初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
（2） 所有使用的离心管最好高压灭菌，而且必须不含DNA酶。
（3） PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等)，防止实验室污染。
（4） 样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
（5） 试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。