特别提示：包括考马斯亮蓝快速染色液在内，本公司的所有产品仅可用于科研实验，严禁用于临床医疗及其他非科研用途！

产品名称：考马斯亮蓝快速染色液
英文名称：Coomassie Blue Fast Staining Solution
产品货号：YT055
产品规格：250ml

本品是以考马斯亮蓝G250为染料，可用于SDS-PAGE或非变性PAGE等蛋白凝胶的无污染、快速、高灵敏染色，或Western转膜后PAGE胶上残余蛋白的检测。18分钟即可检测到100ng条带，约40分钟可检测到10ng条带，约50分钟即可获得背景非常低的凝胶染色，约150分钟即可获得几乎完美的无背景染色的蛋白条带。

本考马斯亮蓝快速染色液是一种无毒，无刺激性气味的高度环保型染色液。普通的常规方法需使用剧毒的甲醇及强刺激性的乙酸，而百奥莱博的考马斯亮蓝快速染色液则采取全新配方，实现了染色时的无毒和无刺激性气味。

本品可以进行高灵敏染色(详细请参考使用说明)，最低可以清晰检测到10ng的蛋白电泳条带，参考下图。


蛋白凝胶加入50ml去离子水微波炉高火煮3min，换去离子水后再煮3min，摇床摇5min，染色30min，脱色2h后的效果图。蛋白(BSA)上样量如图中所示，清晰可见10ng条带，并且凝胶背景已经脱色至几乎完美的无色。

快速染色时，使用本考马斯亮蓝快速染色和常规的考马斯亮蓝染色相比，效果基本一致，参考下图。


百奥莱博考马斯亮蓝快速染色液(采用快速染色方法)和常规考马斯亮蓝法染色蛋白凝胶的染色效果对比。常规方法使用百奥莱博的考马斯亮蓝染色试剂盒(常规法)。蛋白样品为BSA，凝胶为12% SDS-PAGE。考马斯亮蓝快速染色液染色前，凝胶在去离子水中煮沸3min，摇床摇5min，然后用考马斯亮蓝快速染色液染色10min，再用去离子水脱色10min(不脱色也可以观察到类似条带，但背景会深一些)。

无需对蛋白和凝胶进行固定，可以不进行脱色，操作更加简单。本染色液和质谱分析兼容，即经过本染色液染色的蛋白条带或蛋白点与常规的考马斯亮蓝G250染色一样，可以用于后续的质谱分析。

注意事项：
1. 本染色液呈酸性，有轻微腐蚀性，使用时请作必要防护。
2. 需自备去离子水。如无去离子水，也可以使用双蒸水。
3. 如果使用微波炉加热，请特别注意避免沸腾。以免因暴沸而导致凝胶碎裂。

储存条件：4℃，有效期一年。

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SNM502 浓缩型SABC-Cy3免疫荧光试剂盒(适用人/大鼠/小鼠/山羊/兔中一种) 400张片
KFS045 DyLight405标记抗兔免疫荧光染色试剂盒 300T
KFS089 8-16%预制胶(205-14 kDa分离范围;12个样/胶) 一盒(10个)
SY0371 4%-20%梯度预制胶，12孔 1盒（10块）
JN0182 BCA蛋白浓度测定试剂盒 500T
QN1070 植物蛋白提取试剂盒 50T|100T
HR8004 乳清蛋白提取试剂盒 50T|100T
MT0068 全能核酸降解酶(DNA/RNA) 25KU|100KU|10000KU

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名称：Bradford法蛋白定量试剂盒
货号：BTN80814
规格：100mL
Bradford法测定蛋白质浓度是最为常用的蛋白检测方法之一，在酸性条件下，考马斯亮蓝染料能与蛋白质结合形成复合物，其最大吸光值也由465nm转移到595nm，通过颜色的强弱测定蛋白质浓度的高低。本产品是基于Bradford法蛋白检测原理开发的产品。

产品特点：
1．快速，10-20个样品只需要10分钟即可完成测定。
2．稳定，加样混匀后2分钟既可测定，1小时内吸光度变化不超过10%。
3．线性范围在 50～1000μg/mL。
4．最小测量体积为1-20μL，最低测量蛋白量为0.5μg。
5．即开即用，不需要单独购买每个成分再配制。
6．有常规和微量两种检测模式。
7．不受绝大部分样品中的化学物质的影响。巯基乙醇的浓度可高达1M，二硫苏糖醇的浓度可高达5mM。
8．但受略高浓度的表面活性剂影响，各种蛋白质与染料的结合效率可能有差异。

试剂盒组成：

成分	规格
溶液A	100ml
BSA标准(2mg/mL)	1ml
滤纸	20张
说明书	1份

储存条件：常温运输和保存，BSA 标准-20℃保存，有效期一年。

使用方法：

一、常规检测流程：
此方法在蛋白浓度30-1000μg/mL范围内呈现R2 = 0.996的直线线性回归，可精确定量蛋白浓度在此范围内的蛋白样品。
1．制备 1×工作液。溶液A与无菌水按1：4 比例充分混合即为1×工作液(例：4mL溶液A+ 16mL 无菌水 = 20mL 1×工作液)。
2．滤纸过滤。过滤后的工作液室温条件下可稳定使用1-2 星期。
3．检测：蛋白样品与1×工作液按1：50 比例混合(例：100μl蛋白样品 + 5mL 1×工作液，适用于3mL的比色杯；40μl蛋白样品 + 2mL 1×工作液，适用于1mL的比色杯；20μl蛋白样品 + 1mL 1×工作液，适用于平底透明96孔板)。
4．加样后，充分混匀。
5．室温放置5分钟。
6．检测吸光度。波长设定 = 595nm。
注意事项：
1．不同型号、规格的滤纸，具有不同的孔径，导致可通过的分子各不相同。请使用本公司指定提供的滤纸，否则会导致不同的测定结果。
2．检测样品之前，应首先制备蛋白标准曲线。一般可使用BSA。
a)常规检测：建议使用下述浓度的BSA。
 0μg/mL、31.25μg/mL、62.5μg/mL、125μg/mL、250μg/mL、500μg/mL、750μg/mL、1000μg/mL
b)微量检测：建议使用下述浓度的BSA。
 0μg/mL、2.5μg/mL、5μg/mL、7.5μg/mL、10μg/mL、20μg/mL。
3．检测细胞提取物或纯化蛋白样品，应使用相应的缓冲液制备蛋白标准曲线。
4．用 96孔板测定时，应确保没有气泡，否则会绝对增加吸光度的读数。
5．此检测试剂不受绝大部分样品中的化学物质的影响。巯基乙醇的浓度可高达1M，二硫苏糖醇的浓度可高达5mM。但受略高浓度的表面活性剂影响。若SDS高于0.1%，TritonX-100高于0.1%，Tween20，60，80高于0.06%，可取少量样品加水稀释到适当浓度，再行测定。

二、微量检测流程：
此方法在蛋白浓度1～20μg/mL范围内呈现R2=0.992的直线线性回归，可精确定量蛋白浓度在此范围内的蛋白样品。
1．蛋白样品与溶液A按4:1比例混合，例：

蛋白样品	溶液A	适用性
400μL	100μL	平底透明96孔板
2mL	0.5mL	1mL的比色杯
4mL	1mL	3mL的比色杯

2．加样后，充分混匀。
3．室温放置5分钟。
4．检测吸光度。波长设定= 595nm。
注意事项：
1．Bradford蛋白浓度测定的显色反应受许多去污剂的影响。应避免使用SDS，Triton X-100，Tween等溶解蛋白样品。对于难溶解的蛋白样品，可用1MNaOH 溶解和稀释。
2．Bradford蛋白浓度测定的显色反应依赖于蛋白中精氨酸残基的数目，因此不同蛋白间测定的差异可能较大。
3．标准品曲线配制时，如果吸量不准确或者加样枪不精确会造成标准曲线相关系数减小，可根据需要使用倍比梯度稀释的方法来配制，或者使用精确度高的加样枪。
4．由于Bradford法在蛋白浓度增高到一定时候，颜色反应并不成比例增加，因此得到的标准曲线只是在一定范围内可以近似看成直线，每次应按照实际测得的标准曲线计算出相对精确的蛋白浓度。
5．不像其它一些蛋白浓度测定方法(包括Lowry法)，Bradford法测定蛋白浓度不受绝大部分样品中的化学物质的影响。样品中巯基乙醇的浓度可高达1M，二流苏糖醇的浓度可高达5mM。但受略高浓度的去垢剂影响。需确保SDS低于0.125%，Triton X-100低于0.125%，Tween 20低于0.06%，可以考虑用超纯水稀释，透析/除盐，ACETONE/TCA沉淀蛋白后重溶于超纯水等方法来消除干扰物质的影响。