果聚糖广泛分布于植物界。单子叶植物，双子叶植物和绿藻中均存在。

以分子结构和分子重量区别果聚糖。也可以分为三类：菊粉组，果聚糖组和带支链组。菊粉组主要或专门由果糖基果糖键组成。果聚糖组主要或专门由果糖基果糖键组成。带支链组由大量的（2→1）和（2→6）果糖基果糖键共同组成。

目前存在很多测定植物材料和食品中果聚糖的方法。被广泛接受的是水解为D-果糖（和D-葡萄糖）后再测定的方法。这存在将蔗糖，D-果糖和D-葡萄糖分别去除或测定的问题，Pontis(1966)已经报道了蔗糖，D-葡萄糖和D-果糖的去除方法，利用蔗糖酶水解蔗糖，再通过氢氧化钠煮沸破坏随之产生的D-果糖和D-葡萄糖及原有的单糖。据报道，蔗糖酶对菊粉组低聚果糖的作用是缓慢的，可以通过选择正确的孵育时间使其失效。通过测定目前使用的纯化的酵母蔗糖酶，发现很难。

但是，本试剂盒提供的方法操作简单，使用标准实验室设备，并且是精确性，可重复性和专一性都很好。采用的酶是高纯度酶，专一性水解蔗糖，淀粉和果聚糖。采用的蔗糖酶快速水解蔗糖但对1-蔗果三糖和其他果聚糖的水解活性可以忽略不计（McCleary和Blakeney,1999）(图2)。在底物浓度为10 mg/mL时,蔗糖与1-蔗果三糖的相对水解比率为3,800：1。

原理：
蔗糖被一种特定的蔗糖酶水解，这种酶对低聚合度（DP）的FOS（如1-果糖和1,1-酮四糖）没有作用。3淀粉和麦芽糊精被普鲁兰酶和β-淀粉酶水解为麦芽糖和麦芽三糖，然后这些低聚糖被麦芽糖酶水解为D-葡萄糖（1&2）。由于蔗糖酶在30°C下更稳定，因此现在这是该培养步骤的推荐温度。
                      （蔗糖酶，pH 6.5，30°C）
（1） 蔗糖+H₂O            ——>            D-葡萄糖+D-果糖
         （普鲁兰酶、β-淀粉酶、麦芽糖酶，pH 6.5，30°C）
（2） 淀粉+麦芽糖               ——>          D-葡萄糖
D-葡萄糖和D-果糖被硼氢化钠还原为相应的糖醇、D-山梨醇和D-甘露醇。在这个反应中，水解菊粉制剂中低聚果糖还原端的D-果糖基残留物也被还原为糖醇。天然果聚糖和非还原性FOS，如Neosugs®，不受此反应的影响（3）。
                            （硼氢化钠，40°C）
（3） D-葡萄糖+D-果糖    ——>    D-山梨醇+D-甘露醇+还原低聚果糖
FOS、果聚糖和硼氢化物还原的FOS被内切和内切菊粉酶和内切果聚糖酶特异性水解为D-葡萄糖和D-果糖（4）。
   （外菊粉酶、内切菊粉酶和内切左旋酯酶，pH 4.5，40°C）
（4） 果聚糖+水               ——>             D-葡萄糖+D-果糖
使用PAHBAH还原糖法测量来自果聚糖的D-果糖和D-葡萄糖。6这种方法使用简单，D-果糖和D-葡萄糖的颜色响应相同（5）。
                        （PAHBAH试剂，100°C，6分钟）
（5） D-葡萄糖+D-果糖          ——>     PAHBAH显色复合物
套件内容：
用于进行100次检测的试剂盒。包含：
瓶子1。蔗糖酶加β-淀粉酶、普鲁兰酶和麦芽糖酶冻干粉。储存温度低于-10°C。有效期见瓶身。
瓶子2。果糖酶。重组外源和内切菊粉酶和重组内切菊糖-（x2）冻干粉末状的左旋糖苷酶。
储存温度低于-10°C。有效期见瓶身。
瓶子3。菊粉控制面粉。菊粉在α-纤维素存在下冷冻干燥。在室温下储存。有效期见瓶身。
瓶子4。Levan控制面粉。提摩太草在α-纤维素存在下冻干。在室温下储存。有效期见瓶身。
瓶子5。蔗糖控制面粉。蔗糖在α-纤维素存在下冷冻干燥。在室温下储存。有效期见瓶身。
瓶子6。D-果糖标准溶液（1.5 mg/mL）在0.2%（w/v）苯甲酸中的溶液。
在室温下储存。有效期见瓶身。

分析物：果聚糖
检测形式：分光光度计
检测方法：吸光度
波长（nm）：410
信号响应：增加
线性范围：每次测定2.3至55µg D-果糖或D-葡萄糖
检测限：0.16g/100g
总检测时间：~90分钟
应用示例：面粉、婴儿配方奶粉、动物饲料、宠物食品、植物材料（如洋葱）、食品和其他材料
方法识别：AACC方法32-32.01、AOAC方法999.03、AOAC法2016.14、AOAC法2018.07和CODEX方法类型III