AquaPen藻类叶绿素荧光测量仪
用途：AquaPen手持式藻类叶绿素荧光测量仪设计轻巧，可在现场或实验室快速、可靠的测量浮游藻类的叶绿素荧光参数。它配备有蓝色和红色LED发射器、光学过滤，并准确地聚焦提供高达3000µmol.m-2.s-1的光。蓝色激发光（455 nm）用于海藻叶绿素激发，橙红色的激发光（630nm处）用于激发藻蓝色素适用于蓝藻测量。AquaPen可以测量自然界水体中低浓度的浮游植物含量，灵敏度高达0.5µg Chl/L，。 测量的数据存储于仪器内部，通过蓝牙或USB与计算机连接，采用专业的FluorPen软件进行数据传输和分析功能，表格和图形显示结果。参数包括FT，QY，NPQ，OJIP分析，光响应曲线，以及在680和720nm的光密度。
AquaPen有两种版本：AquaPen AP 110-C，比色皿式和AquaPen AP 110-P，探头式。
测量原理：利用调制荧光测量技术，内置LED光源，内设测量给光程序测量并计算叶绿素荧光响应的各种参数。
应用领域：
藻类光合特性与代谢研究；
生物与非生物胁迫检测；
藻类抗胁迫能力研究；
湖沼生物学研究；
海洋学研究；
生物工程学
技术规格：
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探头主体 |
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测量和计算的参数 |
F0 ; FT ; FM ; FM ' ; QY; OJIP; NPQ 1,2; LC 1,2,3; OD680 , OD720等20多个参数 （NPQ1，2：2种给光程序的荧光淬灭曲线；LC1，2，3：3种给光程序的光响应曲线）；OD光密度值仅比色皿版本可以测量。 |
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饱和光强度 |
0~100%可调，最大3000µmol(photon)/m2.s |
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光化光强度 |
10到1000µmol(photon)/m2.s可调 |
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测量光 |
蓝色和红色测量光，0~100%可调，最大0.09µmol(photon)/m2/脉冲 |
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激发光源 |
AP110-C：蓝色 （455 nm）和红橙色（630 nm）LED，光学过滤，精准聚焦； AP110-P：蓝色 （470 nm），其他波长可选。 |
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探测波长范围 |
PIN光电二极管带667~750nm滤光器 |
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FluorPen软件 |
1.1版本，Windows 7或更高 |
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存储容量 |
最大16MB |
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数据存储容量 |
最大149000个数据点 |
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显示 |
2×8字符LCD显示屏 |
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按键 |
密封2键 |
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自动关机 |
无操作5分钟后自动关机 |
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电源 |
可充电锂电池，2000mAh |
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电池电量 |
典型情况下可连续操作48个小时，低电量LCD显示 |
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尺寸 |
165 mm×65 mm×55 mm |
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重量 |
290克 |
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样品固定器 |
AP110-C：4ml比色皿； AP110-P：潜水式光学探头。 |
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工作环境 |
温度0~+50℃，相对湿度0~95%（非冷凝） |
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存储环境 |
温度-10~+60℃，相对湿度0~95%（非冷凝） |
案例介绍：
案例1：高温胁迫后，微球藻在生物反应器内荧光参数的恢复。
随着恢复时间的延长，NPQ值逐渐降低，同时Fv’/Fm’增加，表明微球藻光合活性得到恢复。
案例2：PAHs（多环芳香烃，致癌物）的浓度及处理时间对两个不同样地的浮游藻类光合活性(Fv/Fm)的影响
毒性培养24h后，浮游藻类光合活性受到影响。两个地点的最高浓度实验组的Fv/Fm明显下降（从0.65分别下降至0.24和0.4）。其中Thau地区的藻类光合活性始终没有恢复，表明PSII系统受到不可逆损伤；Bizerte地区的经120h后完全恢复。
近期发表文献：
GOIRIS K., VAN COLEN W., WILCHES I. ET AL. (2015): Impact of nutrient stress on antioxidant production in three species of microalgae. Algal Research. Volume 7, Pages 51-57. DOI:10.1016/j.algal.2014.12.002;
DE MARCHIN T., GHYSELS B., NICOLAY S. ET AL. (2014) Analysis of PSII antenna size heterogeneity of Chlamydomonas reinhardtii during state ransitions. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Bioenergetics, Volume 1837, Pages 121-130. DOI:10.1016/j.bbabio.2013.07.009;
MALAPASCUA J. R. F., JEREZ C. G., SERGEJEVOVÁ M. ET AL. (2014). Photosynthesis monitoring to optimize growth of microalgal mass cultures: application of chlorophyll fluorescence techniques. Aquatic Biology; Volume 22, Pages 123–140. DOI: 10.3354/ab00597; •SALEH M. M., MATORIN D. N., ZAYADAN B. K. ET AL. (2014). Differentiation between two strains of microalga Parachlorella kessleriusing modern spectroscopic method. Botanical Studies, Pages 55-53. DOI: 10.1186/s40529-014-0053-7;
THRANE J. E., HESSEN D. O. AND ANDERSEN T. (2014). The Absorption of Light in Lakes: Negative Impact of Dissolved Organic Carbon on Primary Productivity; Ecosystems. Volume 17: Pages 1040–1052. DOI: 10.1007/s10021-014-9776-2;
THOMMER G., LEYNAERT A., KLEIN C. ET AL. (2013). Phytoplankton phosphorus limitation in a North Atlantic coastal ecosystem not predicted by nutrient load. Journal of Plankton Research. 0(0). Pages 1 – 13. DOI:10.1093/plankt/fbt070;
LAZÁR D, MURCH S. J., BEILBY M. J. ET AL. (2013). Exogenous melatonin affects photosynthesis in characeae Chara australis; Plant Signaling and Behavior. Volume 8(3): e23279. DOI: 10.4161/psb.23279
产地：捷克
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