特别提示:包括TA快速连接试剂盒(pUC-T Simple)(含载体,连接酶)在内,本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!
产品名称:TA快速连接试剂盒(pUC-T Simple)(含载体,连接酶)
英文名称:pUC-T Simple TA Cloning Kit
产品货号:WE0247
产品规格:20次
pUC-T Simple载体是一种高效克隆PCR产物的专用载体,它是由pUC18载体在EcoR V酶切位点处切开,在两侧的3'端添加T而成。由于大部分耐热聚合酶反应时都会在PCR产物的3'端添加一个A,可以与pUC-T 3'端的T互补连接,同时它消除了pUC18载体上的多克隆酶切位点,克隆后的PCR产物将无法使用载体上的限制酶切下,需要在PCR扩增引物上导入合适的酶切位点。此时如果使用PCR扩增引物导入的酶切位点进行DNA酶切时,酶切反应将不会受到T载体上其它多克隆酶切位点上的限制酶影响,可以大大提高酶切效率,增加亚克隆成功率。
试剂盒中配备高效率的T4 DNA Ligase和为快速高效DNA连接优化的2×Quick Ligation Reaction Buffer。连接效率相当于用T4 DNA Ligase 进行常规连接1小时。带有插入片段的重组子可根据α互补原理,进行蓝白斑筛选,判断载体中有无外源基因的插入。克隆后可以用BcaBEST Sequencing Primers和 M13通用引物对PCR产物进行测序。
试剂盒组成:
| 组份 |
20次 |
| pUC-T Simple(50 n g/μl) |
20μl |
| Control Insert(50ng/μl) |
10μl |
| Quick T4 DNA Ligase |
20μl |
| 2×Quick Ligation Reaction Buffer |
120μl |
注意事项:
1、Insert DNA 要求
1)连接使用的PCR片段3’末端应带有“A”尾。有些高保真DNA聚合酶,如我公司的Pfu扩增的PCR产物是平滑末端,可使用加A试剂盒加上A尾后,再进行T载体克隆。
2)PCR产物建议进行切胶回收纯化后再进行T载体克隆,以免PCR产物中的非特异片段或残存引物等杂质影响。推荐使用WE0168快速琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒。
2、连接反应要求
1)本试剂盒能使大多数连接反应在25℃条件下5分钟甚至更短时间内达到反应终点,增加反应时间反应效率不会增强。如用快速连接反应1小时后,转化效率会明显降低;如25℃快速连接反应过夜,则转化效率会下降到75%。
2)2×Quick Ligation Reaction Buffer含有ATP,使用前置于冰上使其融化后充分混匀,建议初次使用分装成小管冻存,避免其反复冻融影响DNA连接效率。
3)由于T4 DNA Ligase中含有甘油,比较粘稠容易挂壁,建议使用之前短暂离心将液体收集到管底,取样时枪头尽量不要深入液面太深,以免粘在枪头上造成损失。
4)如快速连接产物用于电转,因快速连接反应体系中的PEG会影响电转效率,建议使用离心柱将连接产物进行DNA纯化(如WE0170快速DNA产物纯化试剂盒)后再进行电转。
3、感受态细胞要求
建议使用高效的热击转化感受态细胞,这样才可能得到比较理想的阳性克隆,如需进行蓝白筛选,宿主细胞必须具有正确的基因型(F´编码的【lacZ ΔM15】)产生ω片段,才能与载体DNA产生的LacZ α 多肽结合,表现出β-半乳糖苷酶活性(α互补)。pUC-T Simple载体以pUC18载体为基础构建而成,因此,适合pUC18载体的感受态细胞都可以使用。推荐使用本公司WE0251 TOP10感受态细胞、WE0252 DH5α感受态细胞。
4、阳性克隆筛选
阳性DNA片段成功插入至pUC-T Simple Vector中后,一般情况下β-半乳糖苷酶的表达将受到破坏,重组克隆体在含有X-Gal、IPTG、Amp的LB固体培养基上培养时将显示白色菌落。但有时比较短的DNA片段插入载体时,基因的读码框有可能正好与LacZ的读码框相吻合,克隆体也会显示蓝色菌落。
5、阳性对照
为了确认实验操作的正确性,以及实验试剂的有效性,我们建议使用本试剂盒中配备的Control Insert(750 bp)进行阳性对照实验。
使用方法:
1、按以下体系配制反应液:
| 成分 |
反应体系 |
对照体系 |
| pUC-T Simple(50ng/μl) |
1μl |
1μl |
| DNA 插入片段 * |
0.1 -0.3 pmol |
-- |
| Control Insert DNA |
-- |
1μl |
| 2×Quick Ligation Reaction Buffer |
5μl |
5μl |
| Quick T4 DNA Ligase |
1μl |
1μl |
| RNase-Free Water |
补足至10μl |
补足至10μl |
Insert DNA的使用量:在进行克隆时,Vector DNA和 Insert DNA的摩尔比一般为:1:2-1:10,可根据实验情况选择适当的Vector DNA和 Insert DNA的摩尔数比。Insert DNA的使用量=nmol数×660×Insert DNA bp数。本载体1μl(50ng)的摩尔数约为0.03 pmol。
2、轻轻混合,短暂离心。25℃反应5分钟。
注意:反应时间不要超过15分钟,否则会降低连接效率。
3、反应结束后,将DNA连接产物存放于0-4℃,而后进行转化实验;也可将DNA连接产物置于-20℃保存。
注意:勿进行加热失活反应。
4、将连接产物加入50μl感受态细胞中(将感受态细胞置于冰上融化),冰浴30分钟。
注意:用化学法转化时,连接产物的加入量不要超过感受态细胞体积的10%。
5、42℃热击45秒钟,迅速将离心管转移到冰浴中,冰上静置2-3分钟。
6、加入450μl无菌SOC或LB培养基,混匀后置于37℃摇床,150 rpm振荡培养45分钟,使菌体复苏。
7、根据实验要求,取适量已转化的感受态细胞,加到含有X-Gal、IPTG和Amp的LB固体培养基上,用无菌的涂布棒将细胞均匀涂开,将平板置于37℃,直至液体被吸收后,倒置培养,37℃培养12-16小时。
8、计算白、蓝色菌落,挑选白色菌落,使用PCR法或酶切法鉴定插入片段是否正确。
储存条件:-20℃。
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名称:可保种型蓝白T载体
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本产品是环状的可以制备Clion蓝白T载体的质粒DNA。T载体是克隆PCR扩增产物的必不可少的工具,但是由于市场上的各种T载体质量参差不齐,用户很难购买到满意的产品;同时购买的T载体为线性DNA,不能保种,必须反复购买,累计成本很高。为解决这一问题,我司特推出可保种型T载体,用户只需要购买Xcm I内切酶就可以自己制备高质量的T载体,随用随配,十分方便。
产品特点:
1.一次购买,终身拥有。本产品提供制备T载体用的环形质粒DNA,可以象其他质粒一样保种并长期保存。
2. 随用随配,十分方便。用户只需要提供Xcm I 限制性内切酶和基本分子生物学实验条件,就可以自己制备T载体。整个过程只需要两天。
3. T载体含T 率为100%。本方法不是使用传统的加尾法,而是使用Xcm I酶切法。质粒的多克隆位点上预先插入了一段长为1.3 Kb的Xcm I DNA片段,经Xcm I酶切后回收得到的质粒DNA(T载体)两端自然全部带有T 突出,比例远远高于用Taq DNA聚合酶加尾法和TdT 加尾法得到的T载体。
4. 方便各种下游操作。用本产品得到的蓝白T载体插入位点两侧有多种常见的酶切位点,便于后续克隆; Xcm I 位点在Alpha 互补区,可以使用蓝白斑筛选重组子;两边还有T7和SP6 RNA聚合酶启动子,便于制备RNA探针。
储存条件:低温运输,-20℃保存,有效期两年。
使用方法:
一.细菌的转化
1. 将100μl感受态细胞于冰上解冻。注意:最好使用end A1菌种(如DH1、DH5、DH5α、JM109、XL1-Blue等。常用宿主细菌的基因型可以参考《分子克隆手册》等参考书)。因为这类细菌所含DNase少,制备T载体后,残留的DNase对的T末端的破坏机会更小。
2. 取5-10μl本产品加入到感受态细胞中,轻轻旋转几次以混匀内容物。在冰上放置30分钟。
3. 将管放入预加温到42℃的水浴中,热休克90秒。快速将管转移到冰浴中,使细胞冷却1~2分钟。
4. 每管中加900μl LB培养基,37℃振荡培养1小时。
5. 取100μl培养液涂布到含Amp的LB琼脂平板表面。
6. 将平板置于室温直至液体被吸收。
7. 倒置平皿,于37℃培养,12~16小时后可出现菌落。
二.细菌的鉴定
1. 挑取单个菌落进行过夜细菌培养。
2. 按常规的方法进行质粒小量制备。
3. 用Xcm I内切酶按下面条件酶切提取的质粒DNA,如果大规模酶切,需要按比例增加各成分用量:
| 成分 |
使用量 |
| Xcm I Buffer,10× |
5μl |
| 质粒DNA |
<或= 2μg |
| Xcm I |
1μl |
| 超纯水 |
加到50μl |
37℃保温一小时,65℃保温20分钟使酶失活。
4.电泳,本产品被Xcm I酶切后将产生3 Kb和1.3 Kb的两段DNA。
5. 如果Xcm I酶切图谱正确,则按常规的方法进行细菌的保种。
三. T载体的制备
1. 参考《分子克隆手册》等参考书培养细菌和提取质粒DNA。注意:一定要去尽可能去除残留的RNA和蛋白质(含残留DNase)的污染。
2. 用Xcm I酶切质粒。注意:酶切时间最好不要超过一小时,避免残留的DNase对T末端的破坏。
3.电泳后切下含3Kb DNA(既蓝白T载体)的胶段。注意:千万不要用UV照射将要回收的片段,因为UV会使DNA交连,使DNA失去转化细菌的能力。如果酶切的DNA量大,可以使用百奥莱博绿如蓝核酸染料,可以直接在可见光和黑背景下切胶。如果别无选择,最好在长波(360nm)紫外灯下快速切胶,尽可能切掉多余的凝胶。为避免DNA交连,可以使用百奥莱博的DNA防护剂UV Scavenger(BTN60601)
4. 用常规DNA回收方法进行胶回收。
5. 测定T载体DNA的浓度后,将T载体DNA保存在-20℃备用或直接使用。
四.连接反应
1. 短暂离心装有T载体的离心管。
2.在两个离心管中加入下列成分:
| 成分 |
样品管 |
阴性对照管 |
| T4 Ligase Buffer,10× |
1μl |
1μl |
| 蓝白T载体 |
20-50ng |
20-50ng |
| PCR 纯化产物 |
50-500ng |
不加 |
| T4 Ligase |
3-5U |
3-5U |
| 补水到 |
10μl |
10μl |
注意: PCR纯化产物与蓝白T载体的摩尔比最好为3:1-10:1。
3. 用移液器吹打连接反应使之混匀后,16℃孵育12小时(或按T4 Ligase供货商提供的操作说明书进行连接)。
五.细菌转化和鉴定
1. 取5μl连接产物进行转化,具体步骤见本手册一,最好使用含X-gal、IPTG、Amp的LB琼脂平板以便进行蓝白筛选。
2. 按经典的质粒提取+酶切或测序鉴定,可以选用的、在插入位点两侧都有酶切位点的酶有BstZ I、EcoR I和Not I。可以使用pUC/M13 Forward和Reverse测序引物测定插入片段的序列。按菌落PCR方法筛选,可选用百奥莱博的菌落PCR试剂盒(BTN50901)进行快速筛选,需要T7和SP6 RNA聚合酶启动子引物。
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