细胞生物学试剂

HELIOS人血小板裂解物(GMP级)HPCHXCGL05

基本信息
产品名称:
HELIOS人血小板裂解物(GMP级)HPCHXCGL05
英文名称:
UltraGRO-PURE (GMP grade)
国产/进口:
进口
产地/品牌:
美国/HELIOS
型号:
50mL
参考报价:
¥3564
总点击数:
377
更新日期:
2025-10-15
产品类别:

性能参数
名称 品牌 货号 规格 储存
人血小板裂解物-PURE(GMP级)
UltraGRO-PURE (GMP grade)
HELIOS HPCHXCGL05 50mL -20℃
HPCHXCGL10 100mL
HPCHXCGL50 500mL

一、产品概述
HELIOS人血小板裂解物-PURE是一款符合GMP标准的无血清细胞培养添加剂,通过健康人血小板经严格工艺裂解、纯化制成,富含细胞生长所需的多种生长因子(如PDGF、EGF、TGF-β、VEGF等)、细胞因子、黏附蛋白及营养成分。产品不含异种动物成分、血清蛋白及防腐剂,可有效替代胎牛血清(FBS),支持间充质干细胞(MSC)、内皮细胞、上皮细胞等多种原代细胞及干细胞的体外培养,维持细胞高活性、增殖能力及多向分化潜能。

二、产品优势
▶无动物成分/血清替代品
▶用5%的UltraGRO1M-PURE替代高达20%的胎牛血清
▶在原代分离和扩增培养中性能更好
▶缩短种群倍增时间(20~30小时)
▶低成本的低成本选择产生
▶没有粘附因子需要
▶Lot到批次一致性
▶不需要肝素

三、产品的性能展示
1.缩短hMSCs的倍增时间和提高增殖能力
 
图1:UltraGROTM-PURE对人间充质干细胞生长的性能。(A)将UltraGRO“M-PURE培养的人骨髓间充质干细胞(hBM-MSCs)与人血小板裂解物供应商a的倍增时间和(B)累积数量翻倍。两种培养基补充剂与基础培养基的浓度为5%。(N=3)
2.保持多谱系分化的潜力
    
图2:在UltraGRO-PURE中培养的来自骨髓(BM)、脂肪组织(AD)和脐带(UC)的人间充质干细胞的特征。(A)细胞形态在5.100倍放大时呈纺锤形形态。(B)人骨髓间充质干细胞随后可分化为成骨细胞(茜素红染色),200倍放大;(C)脂肪细胞(油红O染色),200倍放大;(D)软骨细胞(阿利新蓝染色),100倍放大。
3.用5% UltraGROTM-PURE替代20%胎牛血清
 
图3:UltraGROTM-PURE对来自骨髓(BM)、脂肪组织(AD)和脐带(UC)生长的人间充质干细胞的性能。(A)20%定义的胎牛血清培养或(B)UltraGROTM-PURE培养的人间充质干细胞5代的平均倍增时间。(C)UltraGROTM-PURE培养的hBM-MSCs、(D) hAD-MSCs和(E)hUC-MSCs的累积数量加倍与UltraGROTM-Adv相当,作为纤维蛋白原耗尽的hPL产物的参考。(N=3)
4.维持细胞表面表型
 
图4:在UltraGROTM-PURE中培养5代的人BM-、AD-和UC-MSC显示了MSC表面标记物的特征性表达。UltraGROTM-Adv.is作为纤维蛋白原缺失hPL产物的参考。

四、质量控制测试
· 外观: 黄色至浅黄色液体。
· 总蛋白: 4.0 - 8.0 g/dL。
· pH值: 6.5 - 8.5。
· 渗透压: 275 - 355 mOsm/Kg。
· 内毒素: ≤ 10 EU/mL
· 支原体: 未检测到
· 无菌性: 无生长
· 性能测试: 测试和记录
· 纤维蛋白原: 20微克/毫升

五、应用范围
用于人类体外组织和细胞培养加工应用

六、重要信息
1. 不溶性颗粒可能会在解冻的 UltraGRO 中形成™-纯正。已发表的研究表明,颗粒不会改变产品的性能。
2.不溶性颗粒可能会在解冻的 UltraGRO 中形成™-PURE,建议在3,400 xg下离心3~5分钟。
3.在 UltraGRO 之后过滤完成介质(例如 5%)™-PURE在基础介质中稀释,不会影响UltraGRO™-PURE补充细胞培养性能。然而,0.22微米过滤 不 推荐用于100% UltraGRO™-纯净浓缩物,因为这可能会减少5%的UltraGRO™-纯细胞培养性能
4.应避免反复的冻融循环,因为它们会导致不可溶性沉淀物的增加,从而导致 UltraGRO 的潜在减少™-纯粹的表演。

七、MSC培养条件
1.媒体:完全培养基由基础培养基(例如α-MEM或其他支持性培养基)和UltraGRO-PURE组成。
2.培养类型:粘附
3.培养容器:细胞培养板、T型瓶、G-Rex培养瓶、细胞培养袋、旋转瓶或垂直轮式生物反应器温度范围:36℃至38℃
4.培养箱环境:湿度为4~6%的CO加湿环境,确保培养容器中实现适当的气体交换。

八、使用说明
1. UltraGRO™-PURE在典型的细胞培养介质中,即含有2mM L-谷氨酰胺的最终浓缩物的α-MEM中,以5%(v/v)的浓度显示MSC的最佳生长。
2. 我们建议将MSCs的接种量控制在每平方厘米约3×103~ 6×103个细胞。
3. UltraGRO™-PURE已经被纤维蛋白原耗尽,并且在细胞培养液中不需要添加肝素。

九、使用详细说明
1. 产品准备
· 解冻:将产品从-20℃冰箱取出,于2-8℃冰箱中缓慢解冻(建议过夜),或37℃水浴快速解冻(需轻轻混匀,避免泡沫产生)。解冻后轻轻颠倒混匀,肉眼观察无沉淀或絮状物即可使用。
· 分装:为避免反复冻融,建议在无菌条件下将解冻后的裂解物分装至无菌离心管中,每管体积根据单次用量确定(如10 mL/管),分装后立即放回-20℃保存。
2. 培养基配制
· 基础培养基选择:根据目标细胞类型选择无血清基础培养基(如MSC专用无血清培养基、 endothelial cell basal medium等)。
· 添加比例:常规培养推荐添加体积分数5%-10%的HELIOS人血小板裂解物-PURE(具体比例需根据细胞类型优化,如MSC建议5%-8%,内皮细胞建议8%-10%)。
· 配制方法:在无菌操作台中,将预热至室温的基础培养基与血小板裂解物按比例混合,轻轻混匀,避免剧烈震荡产生泡沫。配制完成后可立即使用,或2-8℃保存不超过7天。
3. 细胞培养操作
· 细胞复苏与接种:按常规细胞复苏流程操作,复苏后的细胞以适宜密度接种至含HELIOS血小板裂解物的培养基中(如MSC接种密度1×10⁴-5×10⁴ cells/cm²),置于37℃、5% CO₂培养箱中培养。
· 换液频率:根据细胞生长速度调整,通常每2-3天换液一次。换液时弃去旧培养基,用PBS轻柔洗涤细胞1-2次,加入新鲜配制的培养基。
· 细胞传代:当细胞融合度达到70%-80%时进行传代,弃去培养基后用胰酶(如0.25% Trypsin-EDTA)消化,终止消化后离心收集细胞,按1:3-1:5比例接种至新培养器皿中。
· 冻存与复苏:细胞冻存时,可在冻存液中添加10%-20%的HELIOS血小板裂解物(替代FBS),提高冻存细胞活性;复苏时按常规流程操作,使用含血小板裂解物的培养基重悬细胞。
4. 注意事项
· 避免反复冻融:反复冻融会导致生长因子活性降低,建议分装后单次使用。
· 无菌操作:全程严格无菌操作,避免污染;培养基配制后若出现浑浊、沉淀或颜色异常,禁止使用。
· 浓度优化:不同细胞系对血小板裂解物的敏感性存在差异,初次使用建议通过梯度实验(如2%、5%、10%、15%)确定最佳添加比例。
· 兼容性:与多数无血清基础培养基兼容,若需与其他添加剂(如生长因子、抗生素)联合使用,建议先进行兼容性测试。
· 安全提示:产品虽经严格病毒灭活处理,但仍需按生物安全二级(BSL-2)标准操作,避免直接接触皮肤或黏膜。
5. 常见问题解决
· 细胞生长缓慢:检查添加比例是否过低,可尝试提高至10%;或确认细胞接种密度是否适宜,调整接种浓度。
· 细胞贴壁不良:可能因血小板裂解物中黏附蛋白含量不足,可短暂提高添加比例至10%-15%,或在培养基中额外添加纤连蛋白(1-5 μg/mL)。
· 培养基浑浊:提示可能污染,立即终止培养并检测污染源,严格无菌操作重新配制培养基。

十、储存和运输
UltraGRO™-PURE在需要之前冷冻储存最稳定。建议储存温度为-20°C。湿冷冻UltraGRO™-使用前将产品置于37°C水浴中纯净。一次UltraGRO™-PURE解冻后,建议当天完全使用完成的培养基制备(例如5%),或将其分成一次性用量,并在-20°C下储存未使用的用量。

十一、参考文献
1. Scalable Manufacturing of Human Mesenchymal Stromal Cells in the Vertical-Wheel Bioreactor System: An Experimental and Economic Approach.
de Sousa Pinto D, Bandeiras C, de Almeida Fuzeta M, Rodrigues CAV, Jung S, Hashimura Y, Tseng RJ, Milligan W, Lee B, Ferreira FC, Lobato da Silva C, Cabral JMS. Biotechnol J. 2019 Aug;14(8):e1800716. doi: 10.1002/biot.201800716
 
2. A fully-closed and automated hollow fiber bioreactor for clinical-grade manufacturing of human mesenchymal stem/stromal cells.
Amanda Mizukami, Mario Soares de Abreu Neto, Francisco Moreira, Ana Fernandes-Platzgummer, Yi-Feng Huang, William Milligan, Joaquim M. S. Cabral, Claudia L. da Silva, Dimas T. Covas, Kamilla Swiech. Stem Cell Rev. 2018;14(1):141-143. doi: 10.1007/ s12015-017-9787-4.
 
3. Transplantation routes affect the efficacy of human umbilical cord mesenchymal stem cells in a rat GDM model.
Dan Wu, Shan Zou, Haibin Chen, Xiaoyan Li, Yetao Xu, Qing Zuo, Yi Pan, Shi-Wen Jiang, Hung Huang Lizhou Sun. Clin Chim Acta. 2017;475:137-146. doi: 10.1016/j.cca.2017.10.013.
 
4. Integrated culture platform based on a human platelet lysate supplement for the isolation and scalable manufacturing of umbilical cord matrix-derived mesenchymal stem/stromal cells.
de Soure AM, Fernandes-Platzgummer A, Moreira F, Lilaia C, Liu SH, Ku CP, et al. J Tissue Eng Regen Med; 2017;11(5):1630-1640.
 
5. Human Platelet Lysate versus Fetal Calf Serum: These Supplements Do Not Select for Different Mesenchymal Stromal Cells.
Eduardo Fernandez-Rebollo, Birgit Mentrup, Regina Ebert, Julia Franzen, Giulio Abagnale, Torsten Sieben, Alina Ostrowska, Per Hoffmann, Pierre-François Roux, Björn Rath, Michele Goodhardt, Jean-Marc Lemaitre, Oliver Bischof, Franz Jakob & Wolfgang Wagner. Sci Rep. 2017 Jul 11;7(1):5132. doi: 10.1038/s41598-017-05207-1
 
6. Long-Term Expansion in Platelet Lysate Increases Growth of Peripheral Blood-Derived Endothelial-Colony Forming Cells and Their Growth Factor-Induced Sprouting Capacity.
Tasev D, van Wijhe MH, Weijers EM, van Hinsbergh VWM, Koolwijk P. PLoS One. 2015;10(6):e0129935
 
7. Evaluation of human platelet lysate versus fetal bovine serum for culture of mesenchymal stromal cells.
Hemeda H, Giebel B, Wagner W. Cytotherapy. 2014;16(2):170-80.
 
8. Human platelet lysate is a feasible candidate to replace fetal calf serum as medium supplement for blood vascular and lymphatic endothelial cells.
Cytotherapy. Hofbauer P, Riedl S, Witzeneder K, Hildner F, Wolbank S, Groeger M, et al. 2014;16(9):1238-44.
 
9. Human Wharton’s Jelly Mesenchymal Stem Cells Plasticity Augments Scar-Free Skin Wound Healing with Hair Growth.
Sabapathy V, Sundaram B, V M S, Mankuzhy P, Kumar S. PLoS One. 2014; 9(4):e93726.
 
10. The effect of platelet lysate fibrinogen on the functionality of MSCs in immunotherapy.
Copland IB, Garcia MA, Waller EK, Roback JD, Galipeau J. Biomaterials. 2013;34(32) : 7840-50.
 
11. Human platelet lysate stimulates high-passage and senescent human multipotent mesenchymal stromal cell growth and rejuvenation in vitro.
Griffiths S, Baraniak PR, Copland IB, Nerem RM, McDevitt TC. Cytotherapy. 2013; 15(12):1469-83.
 
12. Pooled human platelet lysate versus fetal bovine serum-investigating the proliferation rate, chromosome stability and angiogenic potential of human adipose tissue-derived stem cells intended for clinical use.
Trojahn Kølle SF, Oliveri RS, Glovinski PV, Kirchhoff M, Mathiasen AB, Elberg JJ, et al. Cytotherapy. 2013; 15(9):1086-97.
 
13. Manufacturing mesenchymal stromal cells for phase I clinical trials.
Hanley PJ, Mei Z, da Graca Cabreira-Hansen M, Klis M, Li W, Zhao Y, Durett AG, Zheng X, Wang Y, Gee AP, Horwitz EM. Cytotherapy. 2013;15(4):416-22.
 
14. Human platelets lysate as a promising growth-stimulating additive for culturing of stem cells and other cell types.
Shanskii YD, Sergeeva NS, Sviridova IK, Kirakozov MS, Kirsanova VA, Akhmedova SA, et al. Bull Exp Biol Med. 2013; 156(1):146-51.
 
15. Human platelet lysate as a fetal bovine serum substitute improves human adipose-derived stromal cell culture for future cardiac repair applications.
Naaijkens BA, Niessen HW, Prins HJ, Krijnen PA, Kokhuis TJ, de Jong N, et al. Cell Tissue Res. 2012; 348(1):119-30.
 
16. Platelet lysate from whole blood-derived pooled platelet concentrates and apheresis- derived platelet concentrates for the isolation and expansion of human bone marrow mesenchymal stromal cells: production process, content and identification of active components.
Fekete N, Gadelorge M, Fürst D, Maurer C, Dausend J, Fleury-Cappellesso S, et al. Cytotherapy. 2012; 14(5):540-54.
 
17. Phenotypical and functional characteristics of mesenchymal stem cells from bone marrow: comparison of culture using different media supplemented with human platelet lysate or fetal bovine serum.
Ben Azouna N, Jenhani F, Regaya Z, Berraeis L, Ben Othman T, Ducrocq E, et al. Stem Cell Research & Therapy. 2012, 3(1):6.
 
18. Human platelet lysate permits scale-up of dental pulp stromal cells for clinical applications.
Govindasamy V, Ronald VS, Abdullah AN, Ganesan Nathan KR, Aziz ZA, Abdullah M, et al. Cytotherapy. 2011;13(10):1221-33.
 
19. Alternatives to the use of fetal bovine serum: human platelet lysates as a serum substitute in cell culture media.
Rauch C, Feifel E, Amann EM, Spötl HP, Schennach H, Pfaller W, et al. ALTEX. 2011; 28(4) : 305-16.
 
20. Influence of Platelet Lysate on the Recovery and Metabolic Performance of Cryopreserved Human Hepatocytes Upon Thawing.
Tolosa L, Bonora-Centelles A, Donato MT, Mirabet V, Pareja E, Negro A, et al. Transplantation. 2011; 91(12):1340-6.
 
21. Platelet-lysate-Expanded Mesenchymal Stromal Cells as a Salvage Therapy for Severe Resistant Graft-versus-Host Disease in a Pediatric Population.
Lucchini G, Introna M, Dander E, Rovelli A, Balduzzi A, Bonanomi S, et al. Biol Blood Marrow Transplant. 2010; 16(9):1293-301.
 
22. Generation of mesenchymal stromal cells in the presence of platelet lysate: a phenotypic and functional comparison of umbilical cord blood- and bone marrow-derived progenitors.
Avanzini MA, Bernardo ME, Cometa AM, Perotti C, Zaffaroni N, Novara F, et al. Haematologica. 2009;94(12):1649-60.
 
23. Treatment of refractory acute GVHD with third-party MSC expanded in platelet lysate-containing medium.
von Bonin M, Stölzel F, Goedecke A, Richter K, Wuschek N, Hölig K, et al. Bone Marrow Transplant. 2009; 43(3):245-51.
 
24. Platelet lysate stimulates wound repair of HaCaT keratinocytes.
Ranzato E, Patrone M, Mazzucco L, Burlando B. Br J Dermatol. 2008;159(3):537-45.
 
25. Human platelet lysate allows expansion and clinical grade production of mesenchymal stromal cells from small samples of bone marrow aspirates or marrow filter washouts.
Capelli C, Domenghini M, Borleri G, Bellavita P, Poma R, Carobbio A, et al. Bone Marrow Transplant. 2007; 40, 785–791.
 
26. Platelet lysates promote mesenchymal stem cell expansion: a safety substitute for animal serum in cell-based therapy applications.
Doucet C, Ernou I, Zhang Y, Llense JR, Begot L, Holy X, et al. J Cell Physiol. 2005; 205(2):228-36.
公司简介

公司简介:
       武汉科昊佳生物成立于2011年是一家进口胎牛血清专业供应商,专注细胞生物学试剂开发、销售、服务的高新技术企业。
主要代理产品如下:
1.进口胎牛血清:美国GIBCO、德国PAN-biotech、以色列BI、澳大利亚Ausgene-X、德国CAPRICORN、美国GEMINI、美国Hyclone等。
2.MP Bio、日本同仁、TAKARA、Biolog微生物鉴定板、Borer清洗产品、台湾旭基。 3.Thermo、SIGMA、QIAGEN、MERCK、LEICA、Millipore、Whatman等。
以好产品+好价格+好服务为经营理念,希望不断发展的科昊佳成为您最佳的选择!

武汉科昊佳生物科技有限公司 
地址:武汉市东湖开发区高农路生物医药园中小企业园A7号楼
电话:027-88185565    
E-Mail:khayal@126.com   QQ:2248475041
网址:http://www.biozj.com/


售后服务
相关视频
暂无

资料下载
暂无
联系方式
单位名称:
详细地址:
武汉市东湖开发区高农路生物医药园中小企业园A7号楼
qq:
2248475041
联系电话:

027-88185565

Email:

在线询价
*姓名:
*单位:
职位:
*手机:
*邮箱:
地址:
*地区:
资料:
需要
不需要
报价:
需要
不需要
留言:
验证码:
我希望获得多家供应商报价
首页 我的账户 立即询价 电话咨询