过表达稳转株
一、过表达载体构建
利用同源重组的方法构建LentiCRISPRv2-GOI过表达载体,采用双酶切的方式获得线性化载体,根据同源重组设计目的片段的引物。目的片段的获得分为两步PCR方法,第一步从模板中扩增出目的片段的ORF,第二步扩增加入Gsg-3×FLAG序列。采用one step cloning试剂盒连接目的片段与线性化载体,利用Amp进行抗性筛选。
1、基因序列扩增(图1)
图1 基因序列第一轮扩增
2、基因序列扩增,添加标签及同源序列
3、双酶切pLentiCRISPRv2载体
二、病毒包装
1、培养细胞,配制PEI-Opti-MEM和质粒混合液,将PEI-Opti-MEM加入各质粒混合液中,轻弹管壁混匀,室温静置孵育15~20 min。
2、将上混合液小心滴加到培养基中,轻轻晃动摇匀,在培养箱中继续培养18 h。
3、18 h后小心吸去培养基,加入5 mL新配制的完全培养基。
4、42 h后收集培养上清,离心,0.45µm滤膜过滤,液氮速冻,-80℃保存。
三、细胞转染
1、配制梯度病毒稀释液
2、在六孔板中加入病毒稀释液,随后立即加入细胞,摇匀,以下每孔依次按此操作进行。细胞于培养箱中静置培养48 h。
四、阳性多克隆细胞株筛选
五、阳性单克隆细胞株筛选
1、细胞转染48 h后,更换完全培养基,随后1~2 d更换一次。
2、筛选7天后,对照组细胞全部死亡,实验组细胞扩大培养,同时进行单克隆细胞筛选。
3、96孔板每孔加100 μL细胞悬液,用封口胶将孔板封好,放于培养箱中培养
静置培养48 h后,更换完全培养基,随后1~2 d更换一次,每日观察并记录单克隆形成情况。
六、阳性单克隆细胞株验证
1、测序验证
提取单克隆细胞株基因组DNA,测序验证基因稳定转染单克隆细胞株的基因序列的准确性
2、Western blot或qPCR
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