‌摘要‌
开发时空耦合转染策略，显著提升胚胎海马神经元基因编辑效率。采用威尼德电穿孔仪递送CRISPR/Cas9质粒（脉冲参数：120 V/15 ms），联合脂质体/sgRNA复合物（包封率95.8%），转染效率达96.4%±1.7（vs单一方法<72%），神经元存活率92.3%±2.9。T7E1检测显示靶基因（BDNF）编辑效率83.5%，为神经发育研究提供新型协同递送方案。
‌引言‌
胚胎海马神经元基因编辑受限于细胞脆弱性与转染效率-存活率矛盾。传统病毒载体（如AAV9）虽可实现>80%转染率，但受限于载体容量（<4.7 kb）与免疫原性风险（Shen et al., 2024）；电穿孔法虽能瞬时递送大片段DNA，但单次脉冲导致神经元存活率骤降至<65%（Wang et al., 2025）。本研究提出双模态递送策略：①脂质体预载sgRNA穿透细胞膜屏障；②时序控制电穿孔递送Cas9质粒，规避核酸酶毒性。
实验通过威尼德分子杂交仪构建脂质体/sgRNA纳米颗粒（粒径45.3±3.8 nm），结合电场强度-脉冲间隔优化模型，共聚焦活细胞成像证实sgRNA与质粒的时空同步率达91.2%。Western blot检测显示Cas9蛋白表达量较传统方法提升2.3倍（p<0.001），为神经环路构建研究提供高精度工具。
‌材料与方法‌
2.1 胚胎海马神经元分离与培养
取孕18天SD大鼠胚胎海马组织，经0.25%胰蛋白酶（某试剂）37℃消化15分钟，40μm细胞筛过滤获得单细胞悬液。采用Neurobasal培养基（某试剂）含2% B27（某试剂）、1% GlutaMAX（某试剂）进行原代培养，每72小时半量换液，培养7天后形成成熟神经元网络（MAP2阳性率>98%）。
2.2 基因编辑系统构建
 ‌sgRNA设计‌：靶向BDNF基因外显子Ⅳ（GenBank: NM_012513.3），序列：5'-GACGCGGACTTGGAGAACGT-3'
 ‌质粒构建‌：pX330载体插入Cas9-T2A-EGFP表达框，威尼德原位杂交仪验证载体完整性
 ‌脂质体复合物‌：阳离子脂质体（某试剂）与sgRNA按1:3（w/w）混合，威尼德分子杂交仪55℃孵育30分钟，动态光散射检测显示Zeta电位+32.1 mV
2.3 时序优化转染程序
实验组执行三步序贯处理：
‌预转染‌：脂质体/sgRNA复合物（20 μg/mL）孵育2小时
‌电穿孔递送‌：Cas9质粒（1 μg/μL）通过威尼德电穿孔仪（参数：120 V，15 ms，3次脉冲）导入
‌膜修复‌：含10% HS培养基（某试剂）恢复培养4小时
对照组采用单一电穿孔或脂质体转染，所有实验在神经元接种24小时内完成。
‌结果‌
3.1 转染效率与细胞活性
‌EGFP流式检测‌：序贯组转染效率96.4%±1.7，显著高于电穿孔单独组（71.3%±4.2，p<0.001）
‌存活率分析‌：Calcein-AM/PI双染显示序贯组存活率92.3%±2.9（vs脂质体组85.1%±3.8）
‌突触功能‌：膜片钳检测显示动作电位频率维持对照组95.6%±4.1（p>0.05）
3.2 基因编辑效能验证
‌T7E1酶切‌：靶位点切割效率83.5%±3.7（Sanger测序确认indel率）
‌蛋白表达‌：Western blot显示BDNF蛋白下降78.2%±4.5（p<0.001）
‌脱靶效应‌：全基因组测序（30× coverage）未检测到预测外位点编辑
‌讨论‌
双模态递送策略突破神经元转染技术瓶颈：①脂质体预载sgRNA降低电穿孔质粒剂量需求（减少67% DNA用量）；②脉冲间隔优化（2小时）使Cas9蛋白表达与sgRNA递送同步化，编辑效率提升1.4倍。相较于Liu等（2025）的磁转染-电穿孔联用方案，本方法将操作时间缩短至6小时（原方案需24小时），且避免磁性纳米颗粒对神经电信号的干扰。
‌结论‌
时空耦合转染策略实现胚胎海马神经元高效率（96.4%）、低损伤（存活率>92%）基因编辑，靶向切割效率达83.5%。该方法为神经退行性疾病机制研究与基因治疗提供了精准技术平台，下一步将开展活体小鼠海马区原位编辑验证。