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WB实验中内参抗体选择的原则及技巧

2025-08-08     来源:本站     点击次数:38

内参抗体(Housekeeping Antibodies)是实验中的“标尺”,用于校正样本量差异、评估实验体系稳定性(如Western Blot、免疫组化)。选择合适的内参抗体是确保数据可靠性的关键一步,尤其对高校科研中基因表达、蛋白定量等研究至关重要。

选错内参 = 实验白做
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一、四大黄金原则

 
01 样本种属与组织类型
哺乳动物:β-actin、GAPDH、β-tubulin 是百搭选手,适用全细胞 / 胞浆检测。
植物样本:Plant actin 或 Rubisco 更靠谱,避免跨物种干扰。
特殊物种:如酵母、昆虫,建议查文献选保守管家基因(如 Histone H3)。

02 分子量差异            
黄金法则:目的蛋白与内参分子量差>5kDa,避免条带重叠。例:目的蛋白 45kDa,别选 β-actin(42kDa),换 GAPDH(36kDa)或 β-tubulin(50kDa)。
进阶技巧:用预染 Marker 定位,转膜后剪膜分区域检测,省时省力。若目的蛋白与内参分子量分子量接近,可选用4-20%梯度胶,提高分辨率。

 03 亚细胞定位


 04 实验条件              
代谢研究:缺氧、糖尿病模型慎用 GAPDH(其表达受糖酵解影响)。
细胞增殖:c-Jun 表达波动大,换用 PCNA 更稳定。
凋亡实验:Lamin、TBP 易降解,优先选 Histone H3。

 
二、实战技巧
01 抗体类型与标记选择 
单克隆 vs 多克隆
单抗:特异性强,适合跨物种检测。
多抗:亲和力高但可能有非特异结合,适合保守蛋白。

标记类型
直接检测:选 HRP 或荧光标记抗体。
分步检测:用未标记抗体 + 二抗,适合多重检测(需注意宿主种属匹配)。

02 实验条件优化        
条带异常
信号弱:提高抗体浓度(如从 1:1000 增至 1:500)或延长曝光时间。
杂带多:降低抗体浓度或改用单抗。

省时技巧
分膜检测:转膜后按分子量剪膜,同时孵育目的蛋白和内参抗体。
一抗复用:用 Strip 缓冲液洗膜后,重新孵育另一抗体(如先测目的蛋白,再测内参)。

 
三、常见问题Q&A
Q1: 为什么我的内参条带总是不齐?  
A:可能是上样量不均或转膜效率差异。建议:用 BCA 法精确定量,上样前充分涡旋混匀。转膜时用预染 Marker 监控,确保膜与胶紧密贴合。

Q2:如何避免抗体交叉反应?       
 A:选择不同宿主来源的抗体(如兔抗目的蛋白 + 鼠抗内参),并用对应二抗检测。

Q3: PTM研究如何选内参?            
A:检测磷酸化蛋白时,用未修饰的总蛋白(如 p38 总抗体)作为内参,而非通用内参。

“精准实验,从选对抗体开始!”

内参抗体 = 物种匹配 + 分子量差>5kDa + 亚细胞定位一致 + 实验条件适配

无论是初入实验室的科研新人,还是追求极致精准的资深学者,选择经过严格验证的内参抗体,都是实验成功的基石。

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高特异性:严格验证,目标条带清晰无杂带。
广适用性:覆盖多种样本(人类、小鼠、大鼠等)及实验需求(WB、IF、IP等)。
严格质控:批间一致性高,稳定性优异,减少实验变量。灵
活选择:提供单克隆/多克隆抗体及不同宿主来源(兔、小鼠等),匹配不同实验体系。
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