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蛋白提取(核蛋白、胞质蛋白和膜蛋白)的实验原理及步骤

2025-11-26     来源:本站     点击次数:126

一、实验原理 
蛋白提取试剂盒通过温和裂解细胞或组织释放总蛋白,并利用特异性结合、离心分离及缓冲液洗脱等技术去除杂质(如核酸、脂类等),最终获得高纯度、高活性的目标蛋白。  

核心步骤:  
1、裂解:裂解液(含去污剂、蛋白酶抑制剂等)破坏细胞膜结构,释放胞内蛋白;
2、离心去除碎片:高速离心去除未裂解的细胞碎片、细胞核及大分子杂质;
3、蛋白纯化:通过离心柱或特异性结合树脂选择性吸附蛋白,杂质随废液排出;
4、洗脱:低盐缓冲液或去离子水洗脱目标蛋白,避免变性。

二、材料准备  
试剂盒:蛋白提取试剂盒 (适用于各种动物、植物细胞和组织细菌样本) 

自备材料:  
- 新鲜样本(细胞、组织等)  
- 预冷 PBS 缓冲液 (货号:abs962) 
- 离心机(可达到12,000xg)  
- 冰盒或低温操作台  
- 涡旋振荡器 (货号:abs72001)  
- BCA 蛋白定量试剂盒  (货号:abs9232
- 液氮(组织样本需速冻)  

三、实验步骤 (裂解蛋白所有步骤都需在冰上或4℃进行)
1、样本处理
- 细胞样本:离心收集细胞(1500xg, 3min),PBS 洗涤 2 次,吸尽残留液体。  
- 组织样本:切取 10–50 mg,液氮速冻后研磨成粉末。  

2、裂解 (具体步骤参考不同提取试剂盒说明书)
- 加入 200-500μL 预冷裂解液(含蛋白酶抑制剂),涡旋混匀。  
- 冰上裂解 20-30 分钟,每隔 5 分钟涡旋 10 秒。  

3、离心去碎片  
- 12,000xg、4℃ 离心 10 分钟,取上清(即为总蛋白)转移至新离心管。
-核蛋白需先分离细胞核:低渗裂解后离心收集核沉淀,再溶解。  

4、蛋白纯化
(注:下游做质谱或酶活性分析需要4、5步)
- 将离心柱用平衡缓冲液预处理 5 分钟,离心弃废液。  
- 将裂解液上清加入离心柱,12,000 xg 离心 1 分钟,弃废液。  
- 加入洗涤缓冲液 500 μL,离心 1 分钟,重复 2 次。  

5、洗脱蛋白    
- 加入 50–100 μL 洗脱缓冲液,静置 2 分钟后离心 1 分钟,收集洗脱液(即目标蛋白)。

6、蛋白保存
- 将提取的蛋白样品分装到小离心管中,可根据实验需求短期保存在 - 20°C 或长期保存在 - 80°C 冰箱中,避免反复冻融。

四、结果分析
1、浓度测定:  
- 使用 BCA 法测定蛋白浓度,OD562 计算浓度(标准曲线法)。 

2、纯度评估:  
- 分光光度计检测 A₂₆₀/A₂₈₀ 比值(理想值 1.8–2.0,若 >2.0 提示核酸残留)。 

3、电泳验证:  
- SDS-PAGE 电泳检测条带清晰度,无拖尾或杂带表明纯度较高。

五、常见问题及解决方案

问题

可能原因

解决方案

蛋白得率低

裂解不充分或蛋白酶降解

延长裂解时间,增加裂解液体积;确保添加蛋白酶抑制剂

洗脱液杂质多

洗涤步骤不彻底

增加洗涤次数或延长离心时间

蛋白浓度过高/过低

样本量不匹配或洗脱体积不当

调整样本量与裂解液比例,优化洗脱体积

A₂₆₀/A₂₈₀ 比值异常

核酸或盐离子残留

增加洗涤次数,或使用核酸酶预处理样本

电泳条带模糊

蛋白降解或SDS未充分结合

全程低温操作,电泳前煮沸样本 5 分钟

六、注意事项
1、全程低温操作(冰上或4℃环境),防止蛋白降解;
2、裂解液需现用现配,避免反复冻融;
3、组织样本需充分匀浆,避免未裂解细胞残留。

通过本方案,可高效提取高纯度蛋白,适用于 Western Blot、ELISA、质谱分析等下游实验。

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