RNA适配体与小分子染料结合后会显著增强荧光,提高信噪比,在RNA成像领域展现出巨大潜力。目前已开发出多种荧光RNA适配体,包括Spinach、Broccoli、Mango、Corn、Pepper等。通常情况下,这些适配体可结合多种小分子染料,应用于细胞成像研究,包括多色RNA成像、单分子光谱分析以及构建检测传感器。
Mango RNA适配体是一种高亲和力的核糖核苷酸适配体,这种适配体以纳摩尔亲和力结合一种噻唑橙荧光团衍生物(TO1-biotin),使荧光强度提高数倍。Mango RNA适配体由39个核苷酸组成,相对于其他荧光适配体其碱基长度较短,可轻易进行设计和编码改造。X射线晶体结构研究表明,这类适配体可折叠成含G - 四链体的复杂结构,通过将TO荧光团限制在平面构象中实现荧光增强。
RNA常作为小分子的重要靶点,但开发高效、高选择性的RNA小分子配体仍十分困难。片段导向设计是一种常用的研究方法,该方法从亲和力弱但特异性强的低分子量配体出发,快速开发出靶向目标的高亲和力、高特异性小分子结合剂。
本文通过片段导向微阵列筛选技术,以结构为导向发现了新一代 Mango II RNA适配体TO衍生荧光团。通过对Mango II–TO 结合口袋进行计算分析,识别了疏水区域、口袋体积及适合小分子结合的区域,进而将TO与特定小分子连接,合成出多种新型染料,其中一种(SALAD1)表现出亚纳摩尔级亲和力,且荧光强度比TO1–biotin高出3.5倍。
文章题目为“Structure-informed design of an ultrabright RNA-activated fluorophore”于2025年5月发表在Nature chemistry杂志,研究团队来自美国国家癌症研究所。
作者开发了一种独特的TO衍生荧光团,分析Mango适配体内部的配体结合口袋,并定性对比及MolSoft Pocketfinder 软件分析,研究Mango适配体中TO1类配体的结合模式(图1a),实现结合该适配体小分子的高通量筛选。
通过对 TO1-Mango II 复合物共晶结构分析,显示该配体结合口袋具有疏水性,且体积适合识别小分子配体。TO1 - 生物素与适配体结合时,会堆叠在鸟嘌呤四联体上并与 A12、A17 相互作用,而生物素侧链暴露于溶剂中,在晶体结构中未被解析。将不含生物素侧链的TO结构对接至Mango II适配体后,作者发现在口袋内存在一个空位。推测该空位可容纳一个独立片段分子,该分子可通过 TO上的甲基连接,进而有望改善结合效果(图1b)。
为高效筛选 TO 的共结合片段,作者开发了小分子微阵列(SMM),基于存在或不存在TO 配体的条件下筛选带标签的Mango适配体(图1c)。2214 个小分子片段均含有伯胺和羟基,可通过英国Arrayjet生物芯片点样仪将其固定到异氰酸酯修饰的载玻片上,形成SMM。
同时,带有多聚腺苷酸(polyA)尾的 Mango RNA用 Cy5 进行标记,与玻片进行孵育,观察存在TO以及不存在TO情况下的结合效果,并对每个斑点的荧光强度进行定量分析。Mango II 组与 Mango II+TO筛选结果的皮尔逊相关系数仅为 0.04,表明有无 TO 存在时,筛选得到的阳性化合物集合存在显著差异(图1d)。
共鉴定出30个片段(F1-F30)为 Mango II RNA 的结合阳性片段分子。其中11个分子与TO的结合无竞争性,其余19个为竞争性结合。作者推测部分非竞争性阳性分子可能结合于Mango适配体的可用口袋中(图1b)。
图 1 | Mango 适配体的结构及片段结合特征a. TO 与 TO1 - 生物素的化学结构。b. 存在 TO 时,Mango II RNA 适配体的口袋模型分析。c. 基于片段微阵列(SMM)的筛选流程:使用 Cy5 标记的 Mango II RNA(250 nM),基于存在或不存在竞争性配体 TO(2.5 µM)的条件下进行筛选。每个样品均开展重复筛选。d. 不同孵育条件下(Mango II 组 vs Mango II+TO 组)各片段的 Z 值对比(Z 值阈值 = 3)。红线代表皮尔逊相关性拟合结果。蓝色圆点代表与 TO 呈竞争性结合的片段,红色圆点代表非竞争性结合片段。
针对小分子微阵列筛选中发现的11个与TO呈非竞争性结合的片段,作者探究了这些分子是否会影响配体所发出的荧光。通过向 TO-Mango II 复合物溶液中滴定小分子溶液进行荧光强度测定实验。滴定在500 nM TO下进行,确保 Mango II口袋的结合达到完全饱和,记录荧光强度随片段浓度的变化数据,发现6个非竞争性片段(F1-F3、F5-F6、F10)能不同程度地增强 TO 荧光(增幅为 5% 至 116%),其余5个片段效果微弱或无明显作用(图2a)。值得注意的是,3 个具有荧光增强作用的片段(F1-F3)含有相似的化学结构。
此外,作者还测试了竞争性结合片段(包括3个代表性片段 F28-F30 以及2种已知的 G - 四链体(G4)堆叠配体 BRACO19 和 PhenDC3),它们在荧光实验中表现出竞争性结合特征。在所有片段中,F2(图2b)展现出最具潜力的荧光增强效果,其半数有效浓度(EC50)为 52±19 µM,荧光强度提升 95%,且 Z 值较高(图 2c)。
因此,作者选择F2进行后续研究。F2本身无荧光,这表明F2片段的结合是通过增强TO自身的荧光发挥作用。结果不仅验证了小分子微阵列筛选非竞争性配体的有效性,还首次发现非竞争性、非共价结合的配体能够增强TO的荧光。
随后作者通过多种方法表征了F2与TO-Mango II 复合物的结合情况。表面等离子体共振(SPR)实验中,将带有多聚腺苷酸(polyA)尾的 Mango II RNA 固定在链霉亲和素芯片表面(图2d)。分别给与500 µM F2 或1 µM TO 时,结合信号分别为 10±1 和 41±2 响应单位(RU)。同时给与TO 和 F2 时,观察到的结合水平为 52±4 RU,大致相当于单个组分结合响应的总和(图 2e),这证实了两者可同时结合。将 F2 滴定数据拟合至结合等温线,得到解离常数(KD)为 700±260 µM。平行实验中,样品先与饱和浓度(500 nM)的 TO 预平衡,再进行F2 滴定。
结果显示,TO存在时,F2的解离常数无显著变化(KD=450±120 µM),表明TO与RNA 的结合不会显著影响F2的结合。此外,荧光滴定实验也证实,F2 的结合不会改变TO与适配体的KD值。除此之外,还通过核磁共振(NMR)评估了F2的结合情况。配体峰的正相位信号表明存在结合相互作用(图 2f )。实验结果显示,F2 仅在TO存在时与 Mango II RNA 结合。相反,缺失任一组分(TO 或 RNA)时,NMR 光谱呈现负相位,表明无相互作用发生。综上,这些结果证实F2占据的 RNA 结合位点与 TO 的结合位点不同。
图 2 | 与 TO 共结合 RNA 的片段鉴定a. 荧光强度测定实验(激发波长 λex=510 nm;发射波长 λem=535 nm):使用微阵列筛选发现的代表性非竞争性片段(F1-F3、F5、F6、F10)和竞争性片段(F28-F30)。数据以平均值 ± 标准差(mean±s.d.)表示,基于三次技术重复(n=3)。经典 G - 四链体(G4)结合剂 BRACO19 和 PhenDC3 用作实验的对照。在饱和浓度(500 nM)TO 存在下,向 Mango II RNA 中滴定片段。Mango II-TO 复合物的初始荧光强度被归一化为 1。片段滴定结果显示出荧光增强或淬灭效应。b、c. F2 的化学结构(b)及小分子微阵列(SMM)筛选结果(Z 值及斑点图像;c)。d. 分别针对 TO、F2 及 TO+F2 混合溶液的表面等离子体共振(SPR)结合实验。每个样品均进行三次重复实验,获得SPR结果图。e. SPR 结合定量分析。SPR 数据来自三次技术重复进样(n=3),柱状图数据以平均值 ± 标准差(mean±s.d.)表示。f. 水配体观察梯度光谱(waterLOGSY)核磁共振(NMR)实验:验证有无 TO 存在时 F2 与 Mango II RNA 的结合情况。N - 甲基缬氨酸(N–Me–Val–OH)用作非结合内参对照以作比较。
该研究表明,通过小分子微阵列技术,可开发出性能更优的RNA 结合配体。作者发现了一个能与TO非竞争性结合Mango II 并增强其荧光强度的分子。将该分子与TO共价连接后,所得染料对适配体的亲和力达到亚纳摩尔级别。
SALAD1以独特方式结合Mango II,其特征是通过改变A22的构象形成更封闭的结合位点。该结合构象使羰基氧处于与钾离子成键的距离范围内,而该钾离子可稳定相邻鸟嘌呤四联体(G4)的中心。小分子配体能够将某个基团定位在 G4 钾离子的成键距离内,这种独特的结合相互作用可能为其他G4配体的设计提供启发。
SALAD1的独特性能及其特定分子相互作用,最终催生了一类亮度更高、实用性更强的 RNA 激活型荧光团。由于荧光亮度高且背景信号低,“Mango-SALAD” 系统非常适合共聚焦成像,有望为 RNA 表达与定位研究创造新的机会。本文所述的设计策略不仅对改良型成像探针(包括其他荧光激活 RNA 适配体)的开发具有指导意义,也为药物化学领域开发与治疗相关 RNA 相互作用的生物活性化合物提供了参考。
原文链接:https://doi.org/10.1038/s41557-025-01832-w
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