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Cas9 mRNA在开发动态共价脂质纳米粒介导CRISPR-Cas9编辑中的应用

2026-04-27     来源:本站     点击次数:45

湿性年龄相关性黄斑变性(wAMD)等脉络膜新生血管(CNV)疾病,因反复出血、瘢痕形成常导致失明,传统抗 VEGF 疗法存在应答率有限、需终身注射等痛点。近期《Science Advances》发表的一项重磅研究,开发了 H₂O₂响应型动态共价脂质纳米粒(LNPs),为 CNV 治疗提供了长效、安全的基因编辑方案。作为该研究的关键产品支持方,Absin 的 Cas9 mRNA(mCas9)凭借优异性能,成为基因编辑实验的核心动力。

文献标题:Dynamically covalent lipid nanoparticles mediate CRISPR-Cas9 genome editing against choroidal neovascularization in mice
发表期刊:Science Advances(IF 12.5) | DOI:https://www.science.org/doi/10.1126/sciadv.adj0006
使用 Absin 产品:Cas9 mRNA


一、研究思路:精准靶向,破解传统疗法困局
现有 CNV 治疗面临两大核心难题:一是抗 VEGF 药物需频繁注射,易引发眼内高压、出血等并发症;二是病毒载体介导的基因编辑存在免疫原性和脱靶风险,非病毒载体则面临转染效率低、胞内释放难等问题。

针对这些痛点,研究团队提出创新解决方案:
  • 1. 构建动态共价脂质体库:通过 “一锅法” 合成含亚胺硼酸酯键的脂质体,兼具 pH 和 H₂O₂响应性,实现病变部位精准降解;
  • 2. 优化递送系统:筛选出高效低毒的 LNP-A₄B₃C₇,共递送 Cas9 mRNA 和 VEGFA 靶向 sgRNA,在病变 RPE 细胞内触发释放;
  • 3. 简化给药方式:采用玻璃体腔注射,通过 Müller 细胞转胞吞作用穿透视网膜屏障,避免侵入性更强的视网膜下注射。

二、核心研究成果:长效编辑,疗效超越临床药物
(一)脂质体库筛选与性能验证

研究团队合成了系列含亚胺硼酸酯键的脂质体,经高通量筛选发现 LNP-A₄B₃C₇表现最优:
  • 转染效率显著高于商用转染试剂 Lpf2k 和 FDA 批准的 LNP-ALC-0315(Fig.2D);
  • 细胞毒性低,在 mRNA 浓度达 5μg/ml 时细胞存活率仍超 80%(fig.S20);
  • 可在 CNV 病变部位高浓度 H₂O₂触发下快速降解,释放 mRNA(Fig.3)。
图3:酸和H₂O₂触发的脂质体降解、LNP解离及mRNA释放机制图(原文Fig.3)

(二)体内外基因编辑与治疗效果
1. 体外实验:在 H₂O₂预处理的 RPE 细胞中,LNP-A₄B₃C₇介导的 VEGFA 基因编辑效率达 70.4%,显著降低 VEGFA mRNA 和蛋白分泌(Fig.5E、F);
图4:体外VEGFA基因编辑效率及表达水平检测(原文Fig.5)

2. 体内穿透:玻璃体腔注射后,纳米粒可通过 Müller 细胞转胞吞作用到达 RPE 层,48 小时后
仍能检测到 mRNA 信号(Fig.6A、B);


图5:纳米粒体内视网膜穿透及分布(原文Fig.6)

3. 治疗效果:在激光诱导 CNV 小鼠模型中,单次注射后 VEGFA 基因敲除效率达 57%,CNV 面积减少 76%,疗效与临床药物阿柏西普相当(Fig.8);

图6:CNV小鼠模型体内治疗效果评估(原文Fig.8)

4. 长效优势:二次激光损伤后,该基因编辑方案仍能有效抑制 CNV,而阿柏西普因代谢快未表现出治疗效果(Fig.9)。

图7:二次激光损伤后的长效治疗效果(原文Fig.9)

(三)生物安全性优异
LNP-A₄B₃C₇未引发明显炎症反应,视网膜组织无病理异常,主要脏器及血液学指标均无毒性表现(fig.S49-S52),解决了传统载体免疫原性和细胞毒性问题。
图8:小鼠眼内炎症因子水平检测(原文Fig.S49)
图9:视网膜组织HE染色(原文Fig.S50)
图10:主要脏器HE染色(原文Fig.S51)
图11:血液生化和血液学指标检测(原文Fig.S52)

三、Absin 产品赋能:Cas9 mRNA 成基因编辑核心工具
(一)关键产品:Cas9 mRNA(货号:abs60141)
研究中用于构建 CRISPR-Cas9 编辑系统的核心组件 Cas9 mRNA,由 Absin 提供。该产品具有高纯度、高活性、无免疫原性等优势,可高效翻译出 Cas9 蛋白,与 sgVEGFA 形成核糖核蛋白复合物(RNP),精准切割 VEGFA 基因靶点。
(二)产品核心作用
1. 作为基因编辑的 “剪刀” 模板:Absin 的 Cas9 mRNA 进入 RPE 细胞后,快速翻译产生 Cas9 蛋白,与 sgRNA 协同作用,实现 VEGFA 基因的特异性敲除(Fig.1C);
图12:CRISPR-Cas9基因编辑机制示意图(原文Fig.1)

2. 保障编辑效率与安全性:相较于 Cas9 蛋白,mRNA 形式的 Cas9 在细胞内瞬时表达,避免长期存在导致的脱靶风险,且 Absin 产品的高稳定性确保了体内外实验中基因编辑的高效性(Fig.5E、7B);

图13:体外VEGFA基因indel突变分析(原文Fig.5E)
图14:体内VEGFA基因indel突变分析(原文Fig.7B)

3. 适配递送系统:与 LNP-A₄B₃C₇载体完美兼容,在 H₂O₂响应下释放后仍保持高活性,最终实现 VEGFA 基因表达下调和 CNV 抑制(Fig.7D、E)。

图15:体内VEGFA mRNA和蛋白水平检测(原文Fig.7D、E)

四、总结与展望
该研究通过创新的动态共价脂质体递送系统,结合 CRISPR-Cas9 基因编辑技术,成功实现了 CNV 的长效治疗,为 wAMD 等疾病提供了全新治疗策略。Absin 的 Cas9 mRNA 作为核心工具,凭借优异的活性和稳定性,在体内外基因编辑实验中发挥了关键作用,充分验证了其在基因治疗研究中的可靠性。

未来,Absin 将持续深耕生物试剂领域,为基因编辑、核酸递送等前沿研究提供更优质的产品支持,助力更多疾病治疗方案的突破与转化。

五、相关产品信息

产品名称 产品优势 应用场景
Cas9 mRNA 高纯度、高活性、无免疫原性、瞬时表达 CRISPR-Cas9基因编辑、体内外基因治疗研究

本文内容基于《Science Advances》(DOI: 10.1126/sciadv.adj0006)原文献;文中涉及的原文献图片、数据等知识产权归原期刊及研究团队所有。若存在侵权情形,敬请及时联系我方删除,我方将积极配合处理。

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