做分子实验的人，谁还没被电泳虐过几次？

条带模糊、Marker失踪、孔里一片亮……重提样品半小时，结果还是翻车。其实90%的问题都有迹可循，按这个顺序排查，少走弯路👇

完全无带

胶上一片空白，Marker都消失了；或只有Marker亮，样品孔啥也没有

模糊拖尾

没清晰边界，整片弥散，主带和背景融为一体

微笑/哭脸

条带中间上弯（笑脸）或下弯（哭脸），不在一条水平线

歪七扭八

条带跑偏倾斜，相邻孔高低不齐

孔亮不动

点样孔一片高亮，核酸卡在孔里，下方无明显主带

如果遇到这些情况不要着急，紧急排查一下，条带马上“活”起来!!

9步排查法赶快收藏起来哟！

9步排查法

步骤 1：先看Marker——定方向

●Marker正常 → 查样品和操作

●Marker也翻车 → 查电泳体系

顺手核对三件事：Marker过期没？拿错低浓度Marker没？对应泳道漏加染料没？

步骤 2：核对正负极与跑胶时间

●点样孔靠近负极，核酸向正极跑。插反了？样品直接跑进缓冲液。

●跑太久小分子直接冲出凝胶末端，也会造成"无条带"假象

步骤 3：检查核酸染料

很多时候不是没核酸，是没染上色：

●制胶加染料：加够了吗？琼脂糖太烫时加会导致染料失活；摇匀了吗？

●后染色法：时间够吗？染料过期/稀释过度了吗？反复用了多少次了？

●成像环节：荧光通道选对了吗？Gel Red选了EB通道，拍出来就是黑的。

步骤 4：复盘上样操作步骤5：排查样品本身

Marker正常、操作没问题，再看样品：

●浓度够不够？算一下上样体积里的核酸总量，低于检测限就先浓缩。

●降解了没？基因组DNA/RNA降解呈连续弥散拖尾；质粒降解则超螺旋带变弱、杂带增多。

●杂质多不多？蛋白、多糖、盐分残留→孔亮、拖尾、迁移受阻。

●有沉淀没？上样前离心，避免沉淀堵孔。

步骤6：凝胶配制

●浓度匹配：胶浓度要和片段大小对应，错配=白跑。

●完全融化：有未溶颗粒？加热摇匀到无白点。

●凝固充分：没凝固就拔梳子=孔壁破损=样品渗漏=条带歪斜。

●琼脂糖质量：反复加热、过期的琼脂糖分离效果拉胯，条带容易弥散

步骤7：检查电泳缓冲液

❌不要反复用：TAE/TBE用1-2次就换，离子耗尽、pH漂移会导致跑不动、模糊、微笑带齐上阵。

❌别直接用10×浓缩液：电流暴增、凝胶发热、条带降解。

✅液面高度：刚没过胶面1-2mm。太高电流不均，太低胶面干了，条带都会歪。

步骤8：电压与温度

●电压太高→产热多→胶中间比两侧热→中间跑得快→微笑条带。

●持续高温→凝胶局部融化+核酸降解→条带弥散，RNA电泳尤其明显。

建议：常规琼脂糖电泳80-120V，大胶可降至60-80V，稳一点不亏。

步骤9：物理细节排查

这些看似不起眼的细节，往往是罪魁祸首：

●梳子插歪/拔梳子太猛扯坏孔壁→条带跟着歪

●制胶板没放平→胶厚薄不均→两边电阻不同→条带倾斜

●电泳槽没放平→液面一边高一边低→电流不均→条带斜着跑

●梳齿残留琼脂糖没清干净→堵孔→样品跑不出来→孔亮

📌现在 知道怎么排查条带问题了吗？

如果还没，把这篇文章收藏起来，下次跑胶前翻一遍，保证不会再出错。