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µ-Slide 8孔细胞培养皿在免疫荧光染色IF和高分辨率显微适配的应用

2022-10-17     来源:本站     点击次数:2158

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µ-Slide 8 孔高壁进行免疫荧光染色

 

免疫荧光 (IF) 是使用显微镜深入了解细胞结构和过程的有效方法。这种方法可以评估特定蛋白质的表达和位置,使得免疫荧光对于科学家解决许多细胞生物学问题是必不可少的。

下面我们介绍了一体化简单的方法,用于在 µ-Slide 8 孔高壁中培养和免疫荧光染色粘附的人脐静脉内皮细胞 (HUVEC)

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请注意:在开始细胞免疫荧光实验之前,需要检查几个重要参数,例如目标蛋白质的表达水平、最佳细胞密度以及理想的细胞培养容器几何形状和底物/涂层。此外,还应评估最佳抗体稀释度。此外,阳性和阴性对照是验证 IF 染色所必需的。因此,我们强烈建议在实验前进行彻底的文献研究。

1. 材料

1.1. 试剂和缓冲液

细胞培养

  • 人脐静脉内皮细胞(HUVEC、C-12203、Promocell)

  • 胶原蛋白 IV(354233,康宁)

  • 0.05M HCl (X942.1, Carl Roth)

  • 细胞培养基:内皮细胞基础培养基(C-22210,Promocell)和内皮细胞生长培养基补充混合物(C-39215,Promocell)

  • PBS(14190144,Gibco)

  • 精氨酸酶(A1110501,Gibco)

 

免疫荧光染色
  • PBS(14190144,Gibco)

  • 福尔马林,10%,即用型(HT5011,Sigma Aldrich)

  • 单克隆抗 α-微管蛋白(T5168,Sigma Aldrich)

  • 抗小鼠 IgG-Atto 594 (76085 Sigma Aldrich)

  • 鬼笔环肽 488 偶联物(ab176753,Abcam)

  • 使用DAPI 的ibidi 抗荧光淬灭剂(50011,同上)

  • Triton-X-100(A16046,赛默飞世尔科技)

  • 穿透缓冲液(PBS 中0.5% Triton-X-100)

  • 封闭缓冲液(PBS 中1% BSA + 0.2% Triton X 100)

  • 抗体稀释缓冲液(1% BSA + 0.05% Triton X 100 的PBS 溶液)

  • 牛血清白蛋白 (BSA) (A1470-10G, Sigma Aldrich)

  • ibidi浸油(50101,同上)

 

1.2. 设备

  • µ-Slide 8 孔高壁,ibiTreat(80806,同上)

  • µ-载玻片架(80003,同上)

  • 标准细胞培养设备(移液器、无菌工作台、细胞培养箱、培养瓶、细胞培养基、血细胞计数器等)

  • 带有适当滤光片组的倒置荧光显微镜

 

2.方法

2.1.细胞培养

使用前请阅读说明µ-Slide 8 孔高壁,ibiTreat.在无菌条件下执行所有步骤。在开始实验之前,在标准细胞培养瓶中制备 HUVEC(例如,T75,在0.05 M HCl 中涂有 6.7 µg/ml 胶原蛋白IV 1 小时),细胞粘附在底部。细胞在实验当天应该是健康的并且最佳次汇合。

在整个过程中快速工作很重要,这样孔里就不会变干。

如果没有另外说明,所有给定的体积都是每孔的,所有的孵育步骤都是在室温下进行的。

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•用 Accutase 处理培养的 HUVEC 1-2 分钟以进行分离。

•收集细胞悬液,离心,用少量培养基稀释后进行计数;量取决于所需的细胞浓度。

•计数细胞,在内皮细胞基础培养基和内皮细胞生长培养基补充混合物中,并调整到最终浓度为 2 x 105cells/ml 。

•打开 ibidi µ-Slide 8 Well高壁的包装并将其放在 µ- Slide Rack 或适当的表面上。

•在每个孔中加入 250µl 的 HUVEC 悬浮液。

•盖上随附的盖子。

•将载玻片与支架一起放入培养箱(37°C,5% CO2)中,让细胞附着至少 3 小时或过夜。

•对于延长细胞培养,我们建议每隔一天更换一次培养基。

 

2.2.固定、通透和封闭

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•为您的实验准备足够的穿透缓冲液和封闭缓冲液。

•使用细胞培养吸液装置从孔中吸出细胞培养基。

•用 PBS清洗细胞:将 200 µl PBS 缓慢加入每个孔中并吸出。

•用 200µl 福尔马林 (10%) 固定细胞 10 分钟。

•去除福尔马林并用 200µl PBS 洗涤细胞 3 次。

•将细胞在 200µl 穿透缓冲液中孵育 10 分钟。

•去除穿透缓冲液并用 200μL PBS 清洗细胞。

•用 200µl 封闭缓冲液封闭 30 分钟。

 

2.3.染色和封片

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  • 在封闭步骤中,准备足够的抗体稀释缓冲液来稀释一抗和二抗。

  • 在抗体稀释缓冲液中稀释一抗(α-微管蛋白:1:200稀释)。

  • 将细胞在 150µl 一抗溶液中孵育 2 小时(请注意,许多抗体需要在 4°C 下过夜孵育)。

  • 用 200 µl Blocking Buffer 清洗两次。

  • 在相同的抗体稀释缓冲液中稀释二抗和鬼笔环肽(anti-mouse-IgGAtto 594:1:200 稀释度;鬼笔环肽 488 偶联物 1:1000 稀释度)。

  • 在黑暗中将细胞在 150 µl 的二抗溶液中孵育 2 小时。从此时起,样品应尽可能保存在黑暗中

  • 用 200 µl Blocking Buffer 清洗两次

  • 清空所有孔。

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  • 每孔加入一滴含有 DAPI 的ibidi 封固剂。

  • 储存在 4°C 的黑暗中,直到成像。最好立即进行成像,因为较长的存储期可能会降低图像质量。

 

2.4.成像

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  • 使用适当的滤光片组在荧光显微镜下观察细胞,必要时使用ibidi 浸油。

  • (可选)覆盖图像以创建合并图像

 

3.结果

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HUVEC 在µ-Slide 8 孔高壁中免疫染色 ,宽视场荧光显微镜。F-肌动蛋白细胞骨架被鬼笔环肽(红色)染色。

α-微管蛋白抗体用于染色微管(绿色)。用 DAPI(蓝色)可视化细胞核。该图像是在尼康显微镜上使用具有油浸的 60 倍物镜拍摄的。

 

 

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