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慢性HIV-1感染期间与T细胞免疫恢复相关的炎症相关蛋白

2023-04-26     来源:鹿明生物     点击次数:1771

导读

 

慢性炎症和T细胞失调在感染人类免疫缺陷病毒1型(HIV-1)的个体中持续存在,即使在成功的抗逆转录病毒治疗后也是如此。所涉及的机制尚未完全理解。在这里,我们使用Olink蛋白质组学全面分析了慢性HIV-1感染个体中的异常炎症相关蛋白(IRP),包括24个未接受治疗个体、33个免疫应答者和38个免疫无应答者。使用流式细胞术评估T细胞功能障碍为T细胞耗竭、活化和分化。我们鉴定了一组IRP,包括CXCL11、CXCL9、TNF、CXCL10和IL18,它们与慢性HIV-1感染期间T细胞失调密切相关。有趣的是,聚类5中的IRP,包括ST1A1、CASP8、SIRT2、AXIN1、STAMBP、CD40和IL7,与HIV-1能力大小呈负相关。我们还鉴定了CDCP1、CXCL11、CST5、SLAMF1、TRANCE和CD5,这可能有助于区分免疫应答者和免疫无应答者。总之,不同的炎症环境与T细胞的免疫恢复密切相关,我们的结果为慢性HIV-1感染期间的免疫失调提供了参考。

 

 

论文ID

 

原名:Distinct inflammation-related proteins associated with T cell immune recovery during chronic HIV-1 infection

译名:慢性HIV-1感染期间与T细胞免疫恢复相关的炎症相关蛋白

期刊:Emerging Microbes & Infections

IF:19.568

发表时间:2022.12

通讯作者:王福生、宋锦文

通讯作者单位:中国科学技术大学、国家感染性疾病临床医学研究中心

 

实验设计

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实验结果

 

1. 研究参与者的特征

 

为了研究HIV-1感染者血浆IRP的特征和临床意义,本研究包括四组:20个健康个体(HCs)、24个未经过治疗的HIV-1的个体(TNs)、33个免疫应答者(IRs)和38个免疫反应无应答者(INR)(图1)。表1总结了参与者的特点,INR组年龄大于IR组,此外,INR组的基线CD4 T细胞计数低于IR组。

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1. 研究设计

 

外周血单核细胞(PBMC)和血浆采集自HCsTNsIRsINRs。流式细胞术用于评估T细胞功能障碍,包括T细胞耗竭、活化和分化。使用O-link炎症面板测量92IRP,还获得了参与者的临床参数,以分析IRPHIV-1临床参数和T细胞失调之间的关系。

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表1. 研究对象的临床特征

 

连续变量表示为中位数,分类变量表示为病例数。HC:健康对照;TN:未经过治疗的HIV-1的个体;IR:免疫应答者;INR:免疫无应答者;BMI:体重指数;ART:抗逆转录病毒疗法;NA:不可用;LDL:低于检测下限;NRTI:核苷逆转录酶抑制剂;NNRTI:非核苷逆转录酶抑制剂;PI:蛋白酶抑制剂。

 

2. HIV-1感染个体的T细胞分化

 

我们使用流式细胞仪分析评估了HIV-1感染个体的CD4和CD8 T细胞亚群组成。基于CD45RA、CD27和CCR7的表达来鉴定T细胞亚群。使用统一方法可视化了四组PBMC中T细胞亚群的分布和CD8、CD45RA、CD27和CCR7的表达(图2A)。在CD4 T细胞中,过渡记忆(TTM)细胞的频率降低,但与HCs相比,TNs中效应记忆(TEM)和末端分化(TTD)细胞的频率增加(图2B)。在CD8 T细胞中,TN的中心记忆(TCM)细胞的频率降低,而TNs中TTM和TEM细胞的频率比HCs中更多(图2C)。虽然ART长期抑制HIV-1复制,但T细胞亚群的分布并未完全恢复。在INRs中,CD4+ TEM的频率、CD8+TEM和CD4+TTD细胞增加,CD4+TN的频率和CD8+TN细胞与IRs和HCs相比有所下降(图2B&C)。

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2. HIV-1感染个体的T细胞亚群

 

使用流式细胞术测定外周血单个核细胞(PBMC)中CD45RACD27CCR7的表达。T细胞亚群的定义如下:未经处理的(TNCD45RA-CD27+CR7+)、中心记忆(TCMCD45RA-CD27+CCR7+)、过渡记忆(TTMCD45LACD27+CCR7-)、效应记忆(TEMCD45RACD27-CR7-)和末端分化/效应器(TTD/TECD45LA+CD27+CCR6-)。(A HCsTNsIRsINRsT细胞亚群的整合分析。高维映射上的每个点代表一个单独的细胞,以不同的颜色显示细胞亚群;(B-CHCs中(BCD4和(CCD8 T细胞亚群的比例(n=20TNsn=23),IRsn=33)和INRsn=38)。数据用中位数表示,每个点代表一个参与者。使用非参数非配对Mann-Whitney U检验确定两组之间的统计显著性。

 

我们还评估了T细胞上活化和耗竭标记物的表达。我们发现,与HCs相比,TNs的T细胞活化和耗竭显著增加,ART不能完全恢复正常功能,尤其是INRs。INR组中HLA-DR+、CD38+和HLA-DR+ CD38+CD4 T细胞的频率高于IR组,而对于PD-1+CD4和PD-1+CD8的T细胞,INRs组高于IRs和HCs组。

 

3. 血浆中可溶性IRPs

 

我们使用Olink多重炎症小组测量了92个IRP,以研究HIV-1感染个体血浆IRP的临床意义。基于IRP表达的t-SNE分析清楚地将HCs、TNs和HIV-1感染的ART患者分开(图3A)。HIV-1感染个体(TNs、IRs和INR)和HCs之间有52个IRP显著差异(图3B);TNs和HCs之间有41个IRP显著差异,IRs和HCs之间有26个IRP显著差异,INR和HCs间有34个IRP显著差异。此外,27个IRP在IRs和TNs之间存在显著差异,27个INR和TNs,9个IRs和INR。使用热图显示这些IRP的差异表达(图3C)。HIV-1感染的个体和HCs,特别是TNs之间的IRP谱显著不同。

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3. HIV-1感染个体血浆中炎症相关蛋白的改变

 

A)基于使用Olink平台检测到的血浆中IRP,对具有不同类别的个体进行分布式随机相邻嵌入可视化;(BVenn图显示了不同组合中差异表达IRP的数量[TNsHCsIRsHCsINRsHCs];(C)差异表达IRP的热图。

 

4. IRPs与TNs中HIV-1疾病进展相关

 

我们评估了TNs和HCs中41个差异表达IRP之间的成对相关性。根据相关系数将IRP分为七个聚类(图3A)。结合图3C所示的结果,HIV-1感染导致聚类1、4和5中IRP水平降低,聚类6和7中IRP水平升高。

我们进一步评估了IRP与TNs临床和免疫学变量之间的相关性;聚类7中的IRP与HIV-1疾病进展密切相关(图4B)。在聚类7中的IRP中,CD4 T细胞计数与CSF1、CXCL11、CCL23、IL12B、CCL19和CXCL10的水平呈负相关。HIV-1病毒载量与CSF1、CXCL11、IL12B、CCL19、IL10和CXCL9水平呈正相关。CD4+TN和CD8+TN细胞的频率与CSF1、CXCL11、CCL23、IL12B、CCL19、TNFRSF9、IL10、CXCL9、TNF、CXCL10和IL18的水平呈负相关。HLA-DR+CD38+CD4 T细胞的频率与CXCL11、CXCL9、CXCL10和IL18R1的水平呈正相关。HLA-DR+CD38+CD8 T细胞的频率与CXCL11、IL15RA、IL12B、CXCL9、TNF和CXCL10的水平呈正相关。PD-1+CD4 T细胞的频率与CSF1、CXCL11、CCL23、IL15RA、IL12B、CCL19、TNFRSF9、IL10、CXCL9、TNF、CXCL10、SLAMF1、IL18R1和IL18的水平呈正相关。PD-1+CD8 T细胞的频率与IFN-γ、IL15RA、TNFRSF9和IL18R1的水平呈正相关。

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4. 未经治疗的HIV-1感染个体中炎症相关蛋白与临床和免疫学变量的相关性

 

确定了TNsHCs之间IRP的差异表达,(A)炎症相关蛋白(IRP)之间的相关性使用Spearman相关矩阵显示。基于IRP之间的相关性,这些蛋白质被分成七个聚类,聚类在热图黑框中突出显示;(B)热图显示差异表达蛋白与临床和免疫学变量之间的Spearman相关性,红色和蓝色分别表示正相关和负相关的关系。

 

我们还对聚类7中的17个IRP进行了GO分析,发现最具代表性的类别是炎症反应、NIK/NF-κB信号通路、趋化因子介导的信号通路、细胞对脂多糖的反应和干扰素-γ相关通路,这表明这些生物过程是在HIV-1感染期间发生改变。

 

5. IRP与ART患者的免疫恢复相关

 

我们发现,ART后,聚类7中CXCL11、CXCL9、TNF、CXCL10、SLAMF1、CST5、CDCP1和IL18的水平仍然异常。对ART患者的IRP与临床和免疫学变量之间的相关性分析表明,聚类7中的IRP异常与临床参数密切相关(图5)。在ART患者中,CD4 T细胞计数和CD4/CD8比值与CXCL11水平呈负相关。CD4+TN和CD8+TN细胞的频率与CXCL11和IL18的水平呈负相关,HLA-DR+CD38+CD8T细胞的频率和CXCL9的水平呈正相关,PD-1+CD4T细胞的数量与SLAMF1和IL18水平呈正相关。此外,我们测量了ART患者的HIV-1 DNA和细胞相关的未剪接RNA。ART治疗患者的HIV-1DNA水平与HIV-1RNA水平呈正相关。在聚类5中检测到HIV-1 DNA与ST1A1、CASP8、SIRT2、AXIN1、STAMBP、CD40和IL7水平之间存在显著的负相关(图5)。CDCP1水平与HIV-1 RNA水平呈正相关(图5)。有趣的是,对IRs和INR中IRP与临床和免疫学变量之间的相关性的评估表明,聚类5中的大多数IRP,包括CXCL5、ST1A1、CASP8、SIRT2、AXIN1、STAMBP和IL7,与IRs中的HIV-1 DNA水平呈负相关,但与INR中的HIV-1DNA水平无关。

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5. 抗逆转录病毒疗法(ART)治疗的HIV-1感染者与HCs之间的炎症相关蛋白(IRPs)差异表达

 

热图显示了差异表达蛋白与临床和免疫学变量之间的Spearman相关性,红色和蓝色分别表示正相关和负相关。

 

为了确定可区分INRs和IRs的IRP,使用多变量线性回归检查了IRs和INRs之间九种显著差异表达的蛋白质,包括CDCP1、OPG、CD5、uPA、CXCL11、CST5、SLAMF1、TRANCE和Flt3L。六个IRP是具有统计学差别的,包括CDCP1、CXCL11、CST5、SLAMF1、TRANCE和CD5。受试者操作特征曲线分析表明,这六种蛋白质的评分值为95.06%(图6A)。在六个IRP中,INR中CDCP1、CXCL11、CST5和SLAMF1的水平高于IR,而INR中TRANCE和CD5的水平低于IRs(图6B)。我们还分析了这六种IRP在TNs中的表达,根据低和高CD4T细胞计数和病毒载量将其分为两组。两组之间的IRP没有差异。

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6. 炎症相关蛋白用于区分血浆中的免疫应答者和免疫无应答者

 

A)六种差异表达的炎症相关蛋白(IRP),包括CDCP-1CXCL11CST5SLAMF1TRANCECD5,用于区分INRsIRs。(BINRsIRsCDCP-1CXCL11CST5SLAMF1TRANCECD5的表达水平。数据用中位数表示,两组之间的统计显著性通过非参数、非配对Mann-Whitney U检验确定,AUC表示曲线下面积。

 

此外,我们对IRs和HCs之间的26个差异表达IRP以及INR和HCs中的34个差异表达的IRP进行了GO分析。在前10个生物过程中,细胞对LPS的反应是INRs所明显富集的。一致地,先前的一项研究表明,INRs中的脂多糖(LPS)血浆水平高于IRs。LPS是革兰氏阴性细菌外膜的主要成分,具有高度抗原性。LPS在HIV-1感染期间负责慢性免疫激活和炎症。

 

讨论

 

虽然使用ART成功控制了HIV-1病毒血症,但HIV-1感染者,尤其是INRs人群,仍经历了较高的非艾滋病相关事件发生率,这部分归因于残留的慢性炎症和免疫激活。在这项研究中,我们系统地分析了具有不同疾病状态的HIV-1感染个体的IRP,并分析了这些IRP与T细胞功能障碍和HIV-1疾病进展的关系。我们发现HIV-1感染改变了T细胞分化、活化和耗竭。IRPs的异常表达与HIV-1疾病进展和T细胞功能障碍密切相关(图7)。

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7. 显著改变HIV-1感染个体的炎症相关蛋白及其与免疫恢复的关系

 

HIV-1感染导致炎症相关蛋白(IRPs)的上调,包括CXCL11CXCL9TNFCXCL10IL18CDCP1SLAMF1。虽然进行了抗逆转录病毒治疗(ART),这些IRP仍然异常,特别是在INRs中。重要的是,聚类7中的这些IRPT细胞分化、活化和耗竭密切相关。

 

在我们的研究中,与IRs相比,INRs年龄更大,基线CD4 T细胞计数更低,这与之前的研究一致,研究表明,年龄更大和基线CD4T细胞计数低与HIV-1感染个体的免疫恢复不良相关。先前的研究表明,TN细胞随着年龄的增长而减少,并表现出增殖和效应器分化缺陷,进一步导致老年患者的T细胞功能障碍和活化。

 

HIV-1感染诱导的T细胞功能障碍不能通过ART治疗完全恢复,尤其是INRs。与先前研究的结果一致,与IR和HC相比,我们观察到INR中CD4+TN和CD8+TN细胞的频率降低,以及CD4+TEM和CD8+TEM细胞的频率增加。TN细胞频率降低可能与胸腺输出减少以及T细胞分化为记忆和效应T细胞有关。TEM细胞可以迁移到发炎的外周组织并发挥效应器功能;然而,TEM细胞频率的增加可能与INR的过度激活和加速耗竭有关。此外,与HCs和IRs相比,INRs的T细胞活化和耗竭更高。免疫激活的机制是复杂的。肠道微生物转移到血液中是HIV-1感染期间全身免疫激活的一个原因。LPS是一种微生物易位的指标,在HIV-1感染期间显著增加,INRs中的LPS高于IRs。此外,调节性T细胞在抑制T细胞活化和增殖方面发挥着重要作用。然而,HIV-1感染个体的调节性T细胞减少,可能导致异常免疫激活。

 

炎症是HIV-1感染的标志,但IRP与T细胞失调之间的联系尚未完全了解。因此,我们评估了92个IRP的水平,发现聚类7中的CXCL11、CXCL9、TNF、CXCL10、SLAMF1和IL18与T细胞分化、T细胞活化和耗竭以及TNs的疾病进展密切相关。ART后,HCs和TNs之间一些差异表达的IRP仍然异常,特别是聚类7中的蛋白质。特别是,聚类7中的CXCL9、CXCL10和CXCL11与疾病进展和免疫紊乱密切相关。CXCL9,CXCL10,CXCL11是IFN-γ诱导的趋化因子,由单核细胞、内皮细胞和成纤维细胞分泌,并与细胞表面CXCR3相互作用。这些配体与CXCR3的相互作用影响T细胞向炎症区域的迁移及其向效应T细胞的极化。此外,CXCL9、CXCL10和CXCL11在调节TN细胞向Th1细胞的分化和免疫激活中发挥重要作用。

 

Th1细胞产生IFN-γ、TNF和IL2,并通过刺激细胞毒性T细胞、自然杀伤细胞和巨噬细胞来促进免疫反应。IL18主要由树突状细胞和巨噬细胞分泌,可能通过驱动IFN-γ分泌影响CXCL9、CXCL10和CXCL11的产生。先前的一项研究表明,CXCL9、CXCL10和CXCL11水平可以预测原发性HIV-1感染期间的HIV-1疾病进展。因此,阻断CXCL9、CXCL10和CXCL11/CXCR3轴显示出作为减少免疫激活和衰竭的途径的潜力。多元回归分析表明,CDCP1、CXCL11、CST5、SLAMF1、TRANCE和CD5的组合可用于区分INRs和IRs。CDCP1是T细胞上表达的CD6的配体,在免疫突触中充当共刺激受体,被认为是治疗恶性肿瘤的分子靶点。如前所述,CXCL11与HIV-1疾病进展相关。

 

CST5编码组织蛋白酶家族几种半胱氨酸蛋白酶的抑制剂,是候选的肿瘤抑制基因。CST5和TRANCE可以抑制破骨细胞的活化和吸收,这可能与HIV-1相关的骨疾病有关。SLAMF1,也称为CD150,在HIV-1感染的免疫抑制中发挥重要作用。急性HIV-1感染患者的T细胞CD150表达降低,这与Th1细胞介导的应答受损相关。CD5被广泛报道参与调节T细胞和B细胞中抗原受体的信号传导。我们发现INRs的CD5水平低于IRs,这可能反映了免疫激活反应能力低下。

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我们发现聚类5中的ST1A1、CASP8、SIRT2、AXIN1、STAMBP、CD40和IL7与HIV-1 DNA呈负相关。ST1A1是一种胞浆硫转移酶,调节单核细胞衍生巨噬细胞中HIV-1逆转录。CASP8是一种半胱天冬酶蛋白,是参与激活级联的上游蛋白酶,负责死亡受体诱导的细胞死亡。SIRT2是去乙酰化酶(sirtuin)家族的成员,由NAD+依赖性脱乙酰酶组成,参与多种细胞过程。SIRT2可以通过脱乙酰酶p65调节NF-κB信号传导,这可能影响HIV-1潜伏期。AXIN1是WNT信号的调节器,在正常细胞培养条件下,通过WNT信号通路在HIV-1转录中发挥负作用。STAMBP,也称为AMSH,通过负调节NLRP3炎症小体失稳来抑制炎症因子的释放。先前的一项研究报告称,STAMBP的结构失稳导致HIV-1出芽期间功能丧失。

 

CD40,也称为TNFRSF5,与配体CD40L相互作用,通过诱导HIV抑制性趋化因子和支持抗HIV抗体和细胞毒性T细胞的产生,有助于HIV-1复制的免疫控制。IL7对于T细胞存活和外周T细胞的稳态维持至关重要。IL7显著增强HIV-1前病毒再激活。尽管在这些蛋白质和HIV-1 DNA之间观察到了负相关,但它们的因果关系需要进一步调查。此外,我们发现聚类5中的ST1A1、CASP8、SIRT2、AXIN1、STAMBP、CD40和IL7与IRs中的HIV-1 DNA呈负相关,但与INRs中的HIV-1DNA无相关。HIV-1 DNA在具有最佳免疫状态的IRs中相对稳定。然而,INR易受机会性感染的影响。HIV-1在再激活时的免疫监测减弱,再加上感染诱导的免疫激活,可能会影响INR中HIV-1的稳定性。此外,与IRs相比,INRs具有更高水平的HIV-1 DNA和RNA。

 

这项研究有几个局限性。首先,IRP影响T细胞免疫恢复的机制需要进一步分析,因为关联不一定表明因果关系;第二,我们的研究中基于PCR的检测高估了HIV-1的大小,因为它无法区分复制能力和有缺陷的前病毒基因组。最后,由于缺乏样本,我们无法评估T细胞亚群的功能,包括细胞毒性和细胞因子分泌能力,未来的研究需要揭示异常IRP与T细胞功能的关系。

 

总之,在ART治疗的HIV-1感染个体中,炎症和T细胞失调持续存在。无论患者是否接受ART治疗,聚类7中的一些IRP,如CXCL11、CXCL9、TNF、CXCL10和IL18,均与HIV-1疾病进展和免疫紊乱密切相关,这些结果可能有助于确定有效的免疫干预策略。

 

原文链接: 

https://www.tandfonline.com/doi/full/10.1080/22221751.2022.2150566

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