该工作系统整合了基因工程（双表达指示蛋白与光敏蛋白）、光学硬件校准（空间光调制器与激光共聚焦）及行为学范式，建立了从系统搭建到行为验证的全流程方案。其核心价值在于破解了传统电生理与单光子光遗传学的技术瓶颈，首次在细胞分辨率下同步完成大规模神经活动的读取与操控。

重要发现
01技术核心：双通道光学系统协同运作
研究团队构建了双激光路径的集成系统
成像通道：使用920nm激光激发GCaMP6s钙指示剂，通过双光子扫描显微技术捕捉神经元钙瞬变，实时解析神经活动

刺激通道：采用1064nm低重复频率激光（2MHz）驱动空间光调制器（SLM），生成全息光斑精准靶向C1V1光敏蛋白表达神经元

关键突破：通过荧光塑料片标定技术实现双光路亚微米级空间对齐（图1），校准误差<2微米，确保刺激精准命中目标神经元

图1 SLM校准：将光刺激目标映射到成像坐标 

图2 在线映射功能反应

转基因-病毒联合法：在GCaMP6s转基因小鼠中注射AAV-C1V1，显著提高双表达神经元比例（40-50%）

表达监测标准：通过基线荧光强度、核质比及光响应可靠性（ΔF/F>0.3）筛选健康神经元，规避过度表达导致的细胞毒性

决策行为干预：操控视皮层方向选择性神经元集群，显著改变小鼠对光栅朝向的判别选择

闭环控制：开发Naparm软件实现毫秒级响应映射，10分钟内完成500+神经元的光敏感性筛选（图4）

图4 绘制光激活神经元

图5 一个工作示例：通过使用靶向双光子光遗传学刺激来探测L2/3桶状皮层中感觉反应神经元的感知显著性

创新与亮点

空间分辨率局限：突破单光子刺激的“光斑污染”问题，通过双光子聚焦将刺激精度提升至细胞级（FWHM=15μm）

交叉干扰难题：利用光谱分离设计（920nmvs1064nm），将成像光对光敏蛋白的误激活率降至<5%

行为耦合延迟：集成实时运动校正算法，数据处理速度提升100倍，实现“刺激-响应-分析”的分钟级闭环

模块化流程：提供从系统校准（3小时）到行为实验（5小时）的标准化流程

跨脑区普适性：成功应用于皮层（V1/S1）、海马（CA1/CA3）、嗅球等5类脑区

开源工具包：发布Naparm、STAMovie Maker等软件，支持SLM相位掩模生成与光响应分析

该技术被Nature Reviews Neuroscience点评为“神经因果研究的范式转变工具”，其核心价值在于首次在活体动物中实现功能定义神经集群的精准重构，为意识解码、记忆操纵等前沿领域提供利器。

总结与展望
全光学神经操控技术将神经科学实验范式推向新维度。通过同步实现“读”与“写”的双重操作，该技术首次在活体动物中验证了特定神经元集群对行为输出的因果性控制，例如证明6个振动敏感神经元足以驱动小鼠感知判断。随着三光子成像、红移指示剂等辅助技术的发展，该平台有望拓展至更深层脑区研究。

未来突破将聚焦三个方向：开发超快光敏蛋白（如ChRmine）实现毫秒级时序操控；结合电压成像替代钙指示剂，捕捉单动作电位事件；利用深度学习优化全息算法提升多靶点刺激效率。这些进展将推动该技术从实验室走向临床，为帕金森病神经调控、抑郁症环路矫治等提供精准干预工具。

正如论文通讯作者Michael Häusser所言：“我们正从观察大脑走向导演大脑。”

DOI:10.1038/s41596-022-00691-w.