结合后，通过磁力分离技术快速将磁珠-目标分子复合物与杂质分离，再经洗涤去除非特异性吸附，最终通过改变缓冲液条件（如pH调整、竞争性洗脱）释放高纯度目标产物。该技术兼具高效、温和、可自动化等优势，适用于复杂样本（如血清、细胞裂解液）中微量目标的纯化。

实验步骤（以抗体偶联磁珠为例）

1、样本预处理
离心去杂：将样本（如血清）以3000g离心10分钟，去除细胞碎片或颗粒物。
裂解（可选） ：若目标为细胞内成分，使用裂解缓冲液（含蛋白酶抑制剂）处理样本，超声破碎后离心取上清。

2、磁珠孵育
磁珠活化：涡旋混匀磁珠悬液，取适量磁珠置于离心管中，用预冷PBS洗涤2次以去除储存液。
结合目标分子：将预处理样本与磁珠混合，室温旋转孵育30分钟，确保充分接触。

3、磁分离与洗涤
磁吸去上清：将离心管置于磁力架上静置2-3分钟，待溶液澄清后吸弃上清。
洗涤杂质：加入洗涤缓冲液（如含0.1% Tween-20的PBS），轻柔重悬磁珠，重复磁吸步骤2-3次以去除非特异性结合。

4、目标分子洗脱
竞争性或条件洗脱：
酸性洗脱：加入低pH缓冲液（如pH 2.8甘氨酸-HCl），孵育5分钟，中和后立即转移上清以保护目标活性。
生物素竞争：对于链霉亲和素磁珠，加入过量游离生物素竞争性解离目标分子。
磁珠再生（可选） ：部分试剂盒支持磁珠再生，通过去离子水、再生缓冲液处理后可重复使用。
总耗时：约60分钟，批间差异<5%，回收率可达90%以上。

产品优势

• 释放微球，摆脱样品体积、试剂流速、层析柱压力和洗脱体积的限制。
• 同时实现固液和液液分离，简化步骤，减少损耗，节省时间。
• 突破分泌蛋白和包涵体蛋白纯化的技术瓶颈。
• 减少对仪器设备的依赖，降低维护和保养成本。
• 操作稳定，便于高通量和大规模蛋白纯化。
• 产品性能稳定，批次间差异小。
• 实现高产率、高纯度的目标蛋白。

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