提高小鼠原代肾小球系膜细胞纯度的步骤
2026-01-09 来源:本站 点击次数:51
提高小鼠原代肾小球系膜细胞纯度的关键在于优化分离、鉴定和培养流程。以下是具体方法：
一、优化分离步骤
机械研磨与过滤
采用机械研磨法结合不同孔径不锈钢网筛过滤，可有效去除大块组织和杂质。
消化后使用70 μm与40 μm滤膜依次过滤，反向冲洗40 μm滤膜以收集更多细胞。
酶解法选择
使用0.1%（1 mg/ml）II型胶原酶在37℃条件下振荡消化40分钟，可提高细胞活性和纯度。
二、严格鉴定与筛选
α-SMA免疫荧光染色
α-SMA是系膜细胞的特异性标志物，阳性染色可直观反映细胞纯度。
操作步骤：
细胞固定后，用α-SMA抗体孵育；
荧光标记二抗染色，显微镜下观察阳性信号。
结蛋白（Desmin）免疫荧光染色
Desmin是系膜细胞的另一种标志物，阳性染色可辅助验证纯度。
操作步骤与α-SMA染色类似，但需使用Desmin抗体。
三、优化培养条件
培养基与环境
使用DMEM/F12基础培养基，添加10%胎牛血清和1%双抗（青霉素/链霉素）。
培养条件：37℃、5% CO₂，湿度保持70%-80%。
传代与冻存
细胞长至80%-90%密度时，用0.25%胰蛋白酶-EDTA消化1-2分钟，按1:2~1:5比例分瓶。
冻存液：90%血清+10% DMSO，液氮保存。
四、质量控制与验证
无菌检测
确保细胞不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等污染。
纯度标准
纯度＞90%为合格，若低于此值需优化分离或鉴定方法。
一、优化分离步骤
机械研磨与过滤
采用机械研磨法结合不同孔径不锈钢网筛过滤，可有效去除大块组织和杂质。
消化后使用70 μm与40 μm滤膜依次过滤，反向冲洗40 μm滤膜以收集更多细胞。
酶解法选择
使用0.1%（1 mg/ml）II型胶原酶在37℃条件下振荡消化40分钟，可提高细胞活性和纯度。
二、严格鉴定与筛选
α-SMA免疫荧光染色
α-SMA是系膜细胞的特异性标志物，阳性染色可直观反映细胞纯度。
操作步骤：
细胞固定后，用α-SMA抗体孵育；
荧光标记二抗染色，显微镜下观察阳性信号。
结蛋白（Desmin）免疫荧光染色
Desmin是系膜细胞的另一种标志物，阳性染色可辅助验证纯度。
操作步骤与α-SMA染色类似，但需使用Desmin抗体。
三、优化培养条件
培养基与环境
使用DMEM/F12基础培养基，添加10%胎牛血清和1%双抗（青霉素/链霉素）。
培养条件：37℃、5% CO₂，湿度保持70%-80%。
传代与冻存
细胞长至80%-90%密度时，用0.25%胰蛋白酶-EDTA消化1-2分钟，按1:2~1:5比例分瓶。
冻存液：90%血清+10% DMSO，液氮保存。
四、质量控制与验证
无菌检测
确保细胞不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等污染。
纯度标准
纯度＞90%为合格，若低于此值需优化分离或鉴定方法。
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