类器官技术已成为现代生物医学研究的重要工具,能够在体外模拟人体器官的结构和功能。然而,类器官的培养周期长、成本高,如何有效保存这些珍贵的三维生物模型成为实验室面临的关键挑战。
专为类器官设计的冻存液通过优化配方和冻存流程,成功解决了这一难题,为生物样本库的建立和科研连续性提供了保障。
01 类器官技术与冻存挑战与任何模型系统相比,类器官在生物学上更接近体内条件,成为疾病研究、药物筛选和个性化医疗的宝贵工具。
然而,类器官的培养周期长、成本高,极大限制了它们在生物医学研究中的应用。尤其是脑类器官等需要长期培养的类器官,由于培养周期长达数月,其保存问题尤为突出。
传统的细胞冻存方法应用于类器官时,面临着一个严峻挑战:冷冻/解冻后的存活率低,无法维持类器官的复杂结构和功能活性。
02 类器官冻存液的核心组成冷冻保护剂是冻存液的核心成分,主要防止冰晶形成对细胞造成的损伤。最常见的包括二甲基亚砜(DMSO),它能够穿透细胞膜,降低冰点。
一些新型冻存液也尝试使用乙二醇等替代性或辅助性保护剂。
渗透调节物质如蔗糖、海藻糖和葡萄糖,通过调节渗透压,稳定细胞膜结构,减少冷冻过程中的体积变化损伤。
结构与功能保护成分细胞外基质保护剂如甲基纤维素和聚乙烯吡咯烷酮(PVP),对于维持类器官的三维结构完整性至关重要。
这些成分能够在冷冻过程中保护细胞间连接和基质结构。
凋亡抑制剂如ROCK抑制剂Y27632,可显著减少冻存过程中的程序性细胞死亡,提高复苏后的细胞存活率。
| 成分类别 | 代表物质 | 主要功能 |
| 渗透性冷冻保护剂 | DMSO、乙二醇 | 穿透细胞膜,减少冰晶形成 |
| 非渗透性冷冻保护剂 | 蔗糖、海藻糖 | 调节渗透压,稳定细胞膜 |
| 基质保护剂 | 甲基纤维素、PVP | 维持三维结构完整性 |
| 凋亡抑制剂 | ROCK抑制剂 | 减少程序性细胞死亡 |
| 基础培养基 | Advanced DMEM/F12 | 提供营养支持 |
特别是DMSO能修改水的晶体结构,形成更小、更规则的冰晶,减少对细胞膜的机械损伤。
膜稳定机制同时,这些物质作为渗透缓冲剂,缓解冷冻过程中因水分流失引起的细胞收缩和复苏过程中的膨胀应激。
结构维持机制在神经类器官等复杂系统中,冻存液中的特殊成分如MEDY配方(甲基纤维素、乙二醇、DMSO和Y27632的组合)能抑制内质网介导的细胞凋亡途径,从而保护突触功能。
04 类器官冻存液的实践应用冻存技术使大规模类器官存储成为可能,显著减少了神经类器官的制备时间和成本,便于各种神经类器官和活体脑组织的大规模存储。
药物筛选与评估研究证实,通过hydrogel microencapsulation(水凝胶微胶囊)技术,即使使用低浓度DMSO(2.5%)冻存间充质干细胞,也能维持细胞存活率 above 70%的临床阈值,并保留其多重分化潜力。
个性化医疗冻存盒需要提前平衡至室温或4℃,确保冷冻过程可控。
类器官处理通过150-300g离心3分钟弃上清收集类器官沉淀。离心速度不宜过高,避免对类器官造成机械损伤。
冻存液重悬浓度过低会导致复苏后类器官生长困难,过高则会影响冻存液的保护效果。将混合均匀的悬液分装至冻存管中,每管体积大于0.5mL。
控制性冷冻12-24小时后,可将冻存管转移至液氮中长期保存。
复苏流程将冻存悬液转移至离心管中,缓慢加入5-10倍体积的预热完全培养基,轻柔混匀。
通过150-300g,3分钟离心洗涤类器官/细胞悬液,重复一次以确保去除冻存液中的保护剂。最后,用完全培养基重悬类器官沉淀后即可用于后续培养。
06 技术进展与未来方向研究证明,使用MEDY冷冻的皮质类器官,解冻后继续培养21天、50天后,类器官功能结构被完全保留,即使在低温保存1年半的类器官中,祖细胞和神经元依然能够维持良好状态。
DMSO减量与替代策略例如,水凝胶微胶囊技术使得间充质干细胞能够用低至2.5%的DMSO浓度进行有效冻存,同时维持细胞存活率 above 70%的临床阈值。
同样,在血小板冷冻保存领域,研究证明通过控制速率冷冻(CRF)与深共晶溶剂(DES)结合,可以实现不含DMSO的血小板冻存。
功能保持技术单细胞转录组分析证实,优化的冻存技术不会显著改变类器官的基因表达谱和细胞类型比例,确保了实验结果的可靠性。
随着技术的不断进步,类器官冻存液正朝着更加专业化、精细化的方向发展。不同器官来源的类器官可能需要特制的冻存配方,而自动化冻存系统的整合则将提高实验结果的可重复性。
未来,我们可以预见更加标准化的类器官冻存方案,使全球范围内的实验室能够共享类器官资源,加速生物医学研究进程。
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