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吸入型mRNA-LNP粒径分布、表面电荷及包封效率雾化稳定性表征

2026-01-14     来源:本站     点击次数:74

雾化吸入为mRNA-LNP提供了一种非侵入性、靶向肺部的高效递送策略。然而,雾化过程中产生的剪切力、界面张力及压力变化可能影响LNP的完整性与稳定性,进而改变其递送效率和安全性。本文结合北京元森凯德生物公司研制的雾化给药设备MicroSprayer Aerosolizer(型号:HY-LWH03BEIJING YSKD BIO-TECHNOLOGY CO.,LTD具体实验研究,系统介绍了吸入雾化过程中脂质纳米颗粒(LNP)粒径分布、表面电荷及mRNA包封率的表征方法,阐明其稳定性机制,为吸入型核酸纳米制剂的开发与质控提供技术参考。
(一)主要关键的仪器设备
 
1. 雾化给药设备
MicroSprayer Aerosolizer(型号:HY-LWH03BEIJING YSKD BIO-TECHNOLOGY CO.,LTD)用于大/小鼠气管内雾化给药,产生可吸入气溶胶,控制粒径在 1–5 µm 区间。
 

2. 粒径/电位/包封率表征
动态光散射仪(DLS):测量 LNP 的粒径、PDI 和 ζ 电位。
 
微量紫外-可见分光光度计 / RiboGreen 荧光法:测定 mRNA 包封率(游离 vs 包载 mRNA)。
 

3. 体内成像与定量
小动物活体成像系统:实时捕捉 Luciferase 或 tdTomato 荧光信号,评估器官分布与表达强度。
Living Image® 软件:用于 ROI 圈选与荧光强度定量(p/s/cm²/sr)。
 

4. 分子与蛋白检测
Western blot 系统:检测 FAH、dulaglutide、β-actin 等蛋白表达。
 
ELISA 读板机:测定血清中 dulaglutide 蛋白浓度。
 
qPCR 仪:用于 mRNA 合成后的纯度与完整性验证(补充方法常规步骤)。
 
 

5. 组织学与共聚焦成像
激光扫描共聚焦显微镜:观察肝切片 tdTomato、FAH 免疫荧光共定位。
 
正置荧光显微镜:采集 Sirius red 胶原染色图像,评估肝纤维化面积。
 
石蜡切片机 + 自动染色平台:制备 H&E、Sirius red 切片。
 
 

6. 血清生化分析
全自动生化分析仪:测定 ALT、AST、TBIL、UREA、CREA 等肝肾功能指标。
 
 

7. 辅助设备
超低温冰箱(–80 °C)冷冻离心机(≥15 000 g)超声水浴脂质体挤出器:用于 LNP 制备、分装与储存。
 
(二)实验步骤
脂质纳米颗粒(LNP)是目前mRNA递送的主流载体,其理化性质包括粒径、表面电荷和包封率,直接影响其在体内的分布、细胞摄取和表达效率。在吸入给药过程中,LNP需经历雾化、气溶胶化、沉积等多个动态阶段,这些过程可能破坏脂质双层结构,导致mRNA泄漏或颗粒聚集。因此,建立系统可靠的表征方法,明确雾化对LNP关键性质的影响,是确保吸入制剂有效性与安全性的关键环节。
一、粒径分布与多分散指数(PDI)的表征
方法原理
采用动态光散射(Dynamic Light Scattering, DLS)技术,通过检测颗粒在溶液中的布朗运动所引起的散射光波动,推算粒径大小与分布。多分散指数(PDI)用于评估体系的均一性,PDI<0.2通常表示体系分布较窄。
 
实验操作与数据分析
雾化前后分别取适量LNP样品,用缓冲液适当稀释后,注入比色皿,置于DLS仪中进行检测。
 
记录流体力学直径(Z-average size)与PDI值。若雾化后粒径变化在±5 nm以内,PDI仍低于0.2,可认为LNP在雾化中未发生显著聚集或破碎。
在研究中,无论是中性LNP(ALC-0315)还是带电LNP(含DOTAP/DOPG),粒径均保持在100–200 nm,PDI<0.2,表明雾化过程未破坏其结构完整性。
二、表面电荷(ζ电位)的测定
测定原理
ζ电位反映颗粒表面在溶液中的电性特征,影响其与生物膜的相互作用及体内稳定性。通常通过电泳光散射法测定。
 
关键步骤与结果解读
将LNP样品置于特定电泳池,在电场作用下颗粒发生迁移,仪器通过激光多普勒测速计算ζ电位。
雾化后,中性LNP的ζ电位应保持在−5至+5 mV范围内;带电LNP变化幅度应小于±2 mV。若结果符合,说明雾化过程中未引起脂质重组或表面电荷屏蔽。
例如,研究中DOTAP-LNP雾化后电位仍维持在正电位区间,DOPG-LNP保持负电位,表明表面电荷稳定。
 
三、mRNA包封率的准确评估
常用方法:RiboGreen荧光法
RiboGreen是一种高灵敏度荧光染料,可特异性地结合RNA。通过比较裂解前后LNP中mRNA的荧光信号,计算包封率。
 
操作流程
将样品分为两组:一组用Triton X-100等表面活性剂完全裂解,测得总mRNA含量;另一组不裂解,离心后取上清测游离mRNA。
包封率(%)=(总mRNA − 游离mRNA)/ 总mRNA × 100%。
研究显示雾化后包封率仍高于85%,部分达90%以上,说明雾化未引起mRNA明显泄漏。
 
辅助验证
微量紫外-可见分光光度法也可用于快速检测核酸浓度与纯度,但灵敏度不及荧光法,常作为RiboGreen法的补充。
四、综合分析与稳定性机制探讨

结构耐受性:粒径与PDI稳定反映LNP未融合或碎裂;ζ电位恒定说明表面化学组成未变;高包封率确认mRNA仍受保护。
 
稳定机制:优化配方中的PEG化脂质(如DMG-PEG2000)可在颗粒表面形成空间稳定层;温和的雾化设备(如YSKD Bio-Tech MicroSprayer)减少机械应力;合理脂质组成(如DSPC与胆固醇)维持双层刚性,抵抗界面扰动。
 
五、展望
通过系统评估雾化前后LNP的粒径分布、表面电荷及mRNA包封率,可科学判断其吸入稳定性与工艺适应性。本研究基于DLS、ζ电位分析与RiboGreen荧光法等关键技术,证实了经优化的mRNA-LNP在雾化后仍保持结构完整与功能稳定,为吸入型核酸制剂的开发、质控及临床转化提供了可靠的表征策略与实验依据。未来可进一步结合透射电镜、体外气溶胶性能分析等多维度手段,完善吸入纳米制剂的综合评价体系。
参考文献:
①Nebulized Lipid Nanoparticles Deliver mRNA to the Liver for Treatment of Metabolic Diseases,pubs.acs.org/NanoLett (2025)
 
②Inhalable biomimetic polyunsaturated fatty acid-based nanoreactors for peroxynitrite augmented ferroptosis potentiate radiotherapy in lung cancer,Journal of Nanobiotechnology (2025)
 
附:北京元森凯德生物技术有限公司研制生产的动物雾化吸入给药仪器,主要包括大/小动物肺部气管直接递送装置(动物气道雾化针)、小动物雾化给药仪,动物口鼻吸入、仅鼻腔雾化/鼻脑给药器、全身式暴露染毒、动物烟气/PM2.5染毒系统、粉尘气溶胶发生器、液体气溶胶发生器、静式吸入染毒柜、臭氧动物暴露装置、动物高低压氧舱,此外给客户多样化提供自动型实验动物安乐处死系统(窒息系统、二氧化碳安乐处死箱),实验动物除臭暂存系统,巴马香猪皮,NGI Gentle Rocker智能洗盘装置,NGI新一代撞击器和ACI安德森撞击器的校验与检测。
部分用户案例:哈佛大学,麻省理工学院,新加坡国立大学,瑞士苏黎世联邦理工学院,清华大学,中国科学院上海药物研究所,中国中医科学院中药研究所,美国强生制药公司,丽珠医药集团股份有限公司,中国科学院动物研究所,中国科学院微生物研究所,康龙化成(宁波)生物医药有限公司,中日医院呼吸病学研究中心/中日友好临床医学研究所,北京中医药大学,中国药科大学,沈阳药科大学,复旦大学,浙江大学,四川大学,中南大学湘雅医学院等
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