超滤浓缩管是实验室常用的耗材，通常用于样品的浓缩和缓冲液置换。掌握以下这些小技巧，发挥超滤管最大效力。

1、一次讲清超滤管的截留分子量（MWCO）
很多小伙伴纠结超滤管的截留分子量MWCO怎么选。实际上，截留分子量（MWCO）是用于衡量超滤管截留性能的关键指标，标称MWCO能截留90%的该尺寸的标准球形蛋白。

但是我们平常用到的样品和蛋白，在结构，构象和空间形态上均存在差异，很难与标准测试蛋白完全一致。所以对于蛋白样品的截留浓缩，通常建议超滤管的截留分子量为蛋白分子量的1/3-1/6。如果是病毒或者核酸样品，可以参考下面的表格。

非蛋白类的常见样品MWCO建议：
浓缩外泌体：推荐使用100KD超滤管；
浓缩抗体：推荐使用30KD超滤管；
浓缩慢病毒：推荐使用100KD超滤管；
腺病毒：推荐使用50KD超滤管；
如果不知道分子量，可以参考超滤管的膜标称孔径

2、优化摆放位置增加浓缩效率
如果大家仔细观察，会发现Cytiva的超滤浓缩管的滤膜为直立结构，因此建议离心时，滤膜的摆放方向需要朝向离心机的轴心，这样可以最大利用膜面积，如下图所示：

小提示：如果是多个样品间的平行实验，要特别注意放置方向一致以保证相同的浓缩效率。

3、拿到新的超滤管可以直接用嘛？
为保证超滤膜的稳定，滤膜出厂时添加了微量的甘油和叠氮化钠，如果对实验有影响，可加入一定量的水或者缓冲液进行两次离心。

这也是超滤管看起来是干的，实际上并不影响使用的原因。如果超滤管使用进行保存，可用20％乙醇或0.1 M NaOH浸泡，4 ℃保存，务必保持滤膜润湿，滤膜干燥可能破裂。

4、超滤管可以重复使用嘛？
超滤管通常不建议重复使用，若重复使用，可使用0.1 M-0.5M NaOH（浸泡0.5-1 h后）进行清洁，（最高可使用1M NaOH清洗），然后使用超纯水再次清洗。（注意有些品牌的超滤管不能使用NaOH清洗，Cytiva超滤管可以使用NaOH清洗）

5、样品很珍贵，如果提高样品回收率？
选择MWCO更小的超滤管：例如选择MWCO为蛋白分子量的1/6的超滤管；
适当降低离心力：离心力越高，蛋白与滤膜间的相互作用越强，膜吸附也越明显；
采用短时，多次离心的方式；在离心间隙对样品进行轻柔吹打重悬；
滤膜的摆放方向朝向离心机的轴心；

6、如果超滤管需要灭菌可以怎样处理？
购买到的超滤管是没有预先经过灭菌，去RNA酶和去内毒素处理的。
超滤管都是使用热封设计，不可以直接进行高压高温灭菌，可以使用70%乙醇浸泡3-5分钟后离心清洗，然后用超纯水清洗。
如果需要去除超滤管的RNA酶，建议用0.1% DEPC在37℃浸泡2小时，然后再用超纯水清洗。
如果需要去除超滤管的内毒素，可以尝试用0.5M NaOH清洗，然后用超纯水清洗。

7、蛋白在浓缩时出现了沉淀，怎么办？
蛋白浓缩时过快或者过度浓缩都有可能引起蛋白沉淀，这和每个蛋白本身的性质有关。
初次浓缩蛋白，可以选择多次离心摸索离心时间和参数，如果蛋白容易沉淀，在多次离心间隙对样品进行轻柔吹打后继续浓缩；
或者考虑降低离心力为推荐离心力的30%-50%；
或者改为截留分子量更大的超滤管；

独家优势
全管PP聚丙烯材质：持久耐用不易碎:
Omega改性聚醚砜膜：低蛋白吸附，回收率高，最高耐受1M NaOH清洗;
处理体积大：最高上样量20ml;
截留分子量全：1KD-300KD；