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MCE 5种神经诱导模型造模试剂产品实验方案汇总

2026-10-09     来源:本站     点击次数:68

一表看懂

产品

MCE 货号

模型类型

经典剂量

常用给药途径

PLX5622

HY-114153

小胶质细胞清除

1200 ppm/ 50 mg/kg

饲粮/ i.p.

Pexidartinib

HY-16749

小胶质细胞清除

290–600 ppm / 50 mg/kg

饲粮/ i.p.

MPTP-HCl

HY-15608

帕金森病 (慢性/亚急性/急性)

4–30 mg/kg

i.p.

Oxaliplatin

HY-17371

化疗周围神经病变 (CINP)

6 mg/kg

i.p.

Kainic acid

HY-N2309

颞叶癫痫

1 nmol–30 mg/kg

海马内/i.p.

PLX5622 — 小胶质细胞清除模型

小胶质细胞是中枢神经系统中的主要驻留免疫细胞,其存活高度依赖 CSF1R 信号通路。PLX5622 是一种具有较高选择性的、可穿过血脑屏障的 CSF1R 小分子抑制剂。抑制 CSF1R 后,小胶质细胞失去维持存活所需的信号而快速凋亡并被清除。

实验动物推荐

• C57BL/6
• 雌雄均可,雄性更常用
• 8–12 周

经典造模方案

• 1200 ppm PLX5622,持续自由摄食PLX5622饲料。

研究表明,7 天左右即可产生非常明显的小胶质细胞清除效果;不同脑区的清除程度通常可达到约 90% 左右。继续延长至 14–21 天,清除程度可进一步提高[1]。

实验验证

检测方法/平台

关键标志物/

设门策略

预期阳性结果

(清除成功)

IHC/IF

Iba-1、CD11b、TMEM119

阳性细胞数显著减少,TMEM119+ 细胞近乎消失

Flow Cyt

CD11b+/ CD45+ (int)

该设门内细胞群占比大幅下降

qPCR 

(辅助验证)

AIF1、CSF1R、CX3CR1、TREM2

mRNA 表达水平显著下调

WB 

(辅助验证)

AIF1、CSF1R、CX3CR1、TREM2

蛋白表达水平显著下调

• MCE目前也提供 1200 ppm PLX5622 AIN-76A  (HY-114153C) 饲料,并进行了小鼠小胶质细胞清除验证。

Pexidartinib (PLX3397) — 小胶质细胞清除模型
Pexidartinib (PLX3397),一种具有口服活性的、选择性 ATP 竞争型 CSF1R (M-CSFR) 和c-Kit双靶点抑制剂,在抗肿瘤和神经炎症研究中应用广泛。Pexidartinib 已获 FDA 批准上市,拥有较丰富的临床 PK、安全性及药效学数据,可更好地衔接动物实验与临床转化研究。

实验动物推荐

• C57BL/6
• 雌雄均可,雄性更常用
• 8–12 周

经典造模方案

• 研究中常见:290 ppm PLX3397 饲喂;600 ppm PLX3397 饲喂。

 (1) 290 ppm PLX3397饲喂 7 天可以使成年 C57BL/6J 小鼠脑内小胶质细胞减少约 50%。
 (2) 600 ppm PLX3397 饲喂 7 天可达到约 98.8% 清除,停用抑制剂后,观察到小胶质细胞的显著再生,7 天内脑内小胶质细胞水平达到对照组的 150%[2]。

因此,可以根据实验目的选择:290 ppm 或 600 ppm。

实验验证
——与 PLX5622 (小胶质细胞清除模型) 同。

MPTP hydrochloride — 帕金森病模型
MPTP 是一种可透过血脑屏障的多巴胺能神经毒素。能特异性杀死黑质多巴胺能神经元。该机制高度模拟人类帕金森病的病理过程,是帕金森病动物模型造模的金标准。

实验动物推荐

• 雄性 C57BL/6 小鼠 (最经典)
• 8–12 周,高龄小鼠会更易敏感
• 体重约 25–30 g

经典造模方案

• 急性+亚急性+慢性模型[3]

(1) 急性:每 2 小时注射 4 次 20mg /kg MPTP (free base 含量) ;
(2) 亚急性:每天注射 30 mg/kg MPTP (free base 含量) ,连续 5 天;
(3) 慢性:每日一次腹腔注射 4 mg/kg MPTP (free base含量),连续 28 天

注:文献中使用的一般为 MPTP 的盐酸盐形式,MPTP 分子量为 209.7 (盐酸盐) ,含 17% HCl。如需 20 mg/kg MPTP 剂量,实际给予 MPTP-HCl 为 24.2 mg/kg。

实验验证

检测方法/平台

关键标志物/检测物

模型成功的预期表现

IHC/IF

(组织病理/

分子生物学检测,金标准)

TH、DAT(神经元标志物);Iba-1/CD68(炎症);α-syn(病理蛋白)

TH+ 神经元显著丢失;DAT纤维稀疏;小胶质细胞明显活化;α-syn表达上调或有聚集倾向

HPLC-ECD (验证递质耗竭)

DA、DOPAC、HVA(多巴胺代谢轴);5-HT(血清素系统)

纹状体DA及其代谢产物(DOPAC、HVA)含量显著降低

转棒实验

落棒潜伏期

潜伏期显著缩短

爬杆实验

爬杆总时间

爬杆总时间显著延长

步态分析

步幅、步宽、摆动速度

步幅缩短、步宽增大、摆动速度减慢


Oxaliplatin — CINP 模型
Oxaliplatin 是常用化疗药,但其副作用是化疗诱导周围神经病变 (CINP)。 Oxaliplatin 可改变感觉神经元电压门控钠离子通道的动力学,导致神经元高兴奋性,产生冷诱发痛觉异常和机械性痛觉过敏。Oxaliplatin 诱导的 CINP 模型是评估神经保护策略和镇痛药物开发的关键临床前模型,其症状与患者临床表现高度吻合。

实验动物推荐

• SD 大鼠、Wistar 大鼠、 C57BL/6 雄性小鼠、BALB/c 雄性小鼠等
• 不同种属对奥沙利铂的敏感性不同,需根据实验目的选择合适种属。

经典造模方案

• 急性模型:单次或短期高剂量注射
• 慢性模型:长期低剂量注射

不同的注射剂量和持续时间可导致不同程度的神经损伤。研究表明,单次腹腔注射 Oxaliplatin (6 mg/kg,溶解于浓度为 2 mg/mL 的 5% 葡萄糖溶液中) 可诱导大鼠周围神经病理性疼痛,其主要特征为机械性和冷觉异常性疼痛[4]。

实验验证

检测方法 / 设备

模型成功的预期表现

_

Von Frey 纤维丝法

(机械性痛觉异常)

与基线或溶剂对照组相比,PWT 值显著降低

_

丙酮滴加法 (冷痛觉异常)

丙酮滴加后缩足/抖足次数显著增加,潜伏期显著缩短

_

神经电生理记录仪 (NCV 测定,神经传导速度)

尾神经和指神经的传导速度显著减慢,波幅可能降低

_
 

Kainic acid — 颞叶癫痫模型
红藻氨酸 (Kainic acid, KA) 是离子型谷氨酸受体亚型——红藻氨酸受体的特异性激动剂。KA 通过激活海马 CA3 区红藻氨酸受体,诱发兴奋性毒性,导致神经元过度去极化、钙超载和一系列级联损伤,最终引起海马神经元死亡和癫痫样放电。KA 诱发的癫痫模型在行为学和病理学上与人类颞叶癫痫 (TLE) 高度相似,是癫痫机制研究和抗癫痫药物评价的核心模型之一。

实验动物推荐

• C57BL/6 小鼠、SD 大鼠等。
• 不同品系对 KA 敏感度不同。例如 C57BL/6 小鼠比 BALB/c 小鼠更能耐受 KA 诱导的神经毒性,大鼠中 SD 与 Wistar 的致痫阈值也有所不同,正式实验前应进行预实验。

经典造模方案

• 全身系统性给药 + 海马内局部注射方案

(1) 全身系统性给药 (IP):小鼠腹腔注射 25 mg/kg 红藻氨酸,并使用改良的 Racine 评分标准,每 30 分钟监测一次小鼠的行为癫痫发作,持续 4 小时;如果小鼠在前 30 分钟内出现 4 级行为癫痫发作,则停止注射 KA。否则,每 30 分钟逐渐增加 KA 剂量 (5 mg/kg) ,持续 4 小时,直至小鼠出现 4 级行为癫痫发作[5]。
(2) 海马内注射 (IH): 小鼠麻醉后固定于立体定位仪上,目标区域为海马 CA1 区,海马内注射组以 150 ng/µL 的浓度 (1 µL,10 分钟内注射完毕) 注射 KA,随后保持针头 3 分钟[6]。

实验验证

检测方法/设备

模型成功的预期表现

行为学录像 + 改良 Racine 评分

注射后绝大部分动物出现 Ⅳ-Ⅴ级全身性发作;SE 持续总时长显著长于假手术组

视频-EEG 同步监测

脑电图出现阵发性高频尖波或棘波群,且电生理发作与视频行为学(Ⅳ-Ⅴ级)在时间上严格同步

Nissl 染色(尼氏体)

与对照组相比,模型组海马神经元出现显著固缩、深染 (Nissl);NeuN+ 细胞计数显著减少

NeuN IHC(神经元核)


小结
 
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参考文献:

[1] Liu Y, et al. Concentration-dependent effects of CSF1R inhibitors on oligodendrocyte progenitor cells ex vivo and in vivo. Exp Neurol. 2019 Aug;318:32-41.
[2] Najafi AR, et al. A limited capacity for microglial repopulation in the adult brain. Glia. 2018 Nov;66(11):2385-2396.
[3] Santoro, M., et al. Neurochemical, histological, and behavioral profiling of the acute, sub-acute, and chronic MPTP mouse model of Parkinson's disease. Journal of Neurochemistry, 164, 121–142.
[4] Jiang Y, et al. Oxaliplatin-induced neuropathic pain in cancer: animal models and related research progress. Front Pharmacol. 2025 May 30;16:1609791.
[5] Okoh, J., et al. Targeted suppression of mTORC2 reduces seizures across models of epilepsy. Nat Commun 14, 7364 (2023).
[6] Xing LW, et al. Comparison of epilepsy mouse models induced by kainic acid through different administration routes. Brain Res Bull. 2026 Jan;234:111684.

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