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AbMole LPS(脂多糖)在免疫激活、动物造模等方面的应用及案例分享

2025-04-24     来源:本站     点击次数:34

 
1. 免疫激活作用 
LPS(Lipopolysaccharides,M9524)是经典的病原相关分子模式(PAMP),通过结合免疫细胞表面的模式识别受体(如TLR4/MD2/CD14复合体),激活下游信号通路;
促炎细胞因子释放:LPS可诱导巨噬细胞、树突状细胞等分泌TNF-α、IL-1β、IL-6、IL-8等炎症因子;
趋化因子表达:LPS能促进单核细胞、中性粒细胞等向炎症部位迁移;
共刺激分子上调:LPS可增强抗原呈递细胞(如树突状细胞)的MHC-II和CD80/CD86表达,促进T细胞活化。AbMole是ChemBridge中国区官方指定合作伙伴
 
成功案例:来自AbMole的LPS(M9524)被科研人员用于诱导激活巨噬细胞,并通过体外共培养来研究EGFR突变的肿瘤细胞对巨噬细胞吞噬能力的影响(图1)
 
图1. LPS(M9524)处理后的巨噬细胞的吞噬能力可被含有EGFR突变的肿瘤细胞阻断[1]。
 
2. 炎症反应机制研究 
LPS(脂多糖,M9524)被广泛用于研究各类炎症信号相关的通路。
激活NF-κB通路:LPS可通过TLR4触发MyD88依赖性信号,导致NF-κB核转位,调控炎症基因转录;
激活MAPK通路:LPS可诱导JNK、ERK、p38磷酸化,调控细胞增殖、凋亡或分化;
炎症小体激活:高浓度LPS可激活NLRP3炎症小体,促进IL-1β的成熟释放;
 
成功案例:AbMole的LPS(脂多糖,Lipopolysaccharides,M9524)被科研人员用于激活NF-κB信号通路,以评估表儿茶素没食子酸酯(EGCG)对NF-κB信号通路的影响。发现LPS可有效激活NF-κB信号通路,而EGCG对LPS诱导的NF-κB激活没有显著影响(图2)。
 
图2. EGCG不能抑制HFLS和MH7A细胞中LPS(M9524)诱导的NF-κB活化[2]
 
3. 构建疾病模型 
败血症模型:高剂量LPS(脂多糖,M9524)注射小鼠后可模拟脓毒症中的“细胞因子风暴”,因此可用于构建败血症动物疾病模型;
肠炎模型:LPS可用于诱导肠道上皮细胞或免疫细胞炎症,模拟炎症性肠病(IBD);
神经炎症研究:LPS可刺激小胶质细胞或星形胶质细胞,常用于研究阿尔茨海默病、帕金森病等神经退行性疾病中的炎症机制;
肺损伤模型:LPS激活TLR4后,免疫细胞会释放大量的促炎细胞因子并加剧炎症反应,诱导肺部组织细胞的凋亡。因此LPS也常用作小鼠肺损伤模型的造模剂;
 
成功案例:由AbMole提供的LPS(Lipopolysaccharides,M9524)被用作一种刺激剂,用于模拟脓毒症诱导的急性肺损伤(ALI)的炎症反应。实验人员发现LPS可引起支气管上皮细胞BEAS-2B的凋亡。
 
图3. 经LPS(M9524)处理后,支气管上皮细胞BEAS-2B中凋亡细胞数量显著增加,而Tranilast预处理能够显著减少凋亡细胞的数量[3]。
 
4. 细胞应激与死亡研究 
细胞凋亡LPS(M9524)可通过激活caspase通路诱导某些细胞(如内皮细胞)凋亡;
坏死性凋亡(Necroptosis):LPS可以通过激活TLR4和RIPK1/RIPK3/MLKL信号通路,导致细胞膜的通透性增加,引起细胞肿胀和破裂,最终引发细胞坏死性凋亡;
自噬调控:LPS可通过TLR4或炎症因子间接调控自噬活性;
铁死亡:LPS通过激活NF-κB,促进炎症因子(IL-6、TNF-α)释放等方式加剧氧化应激,进而可诱导细胞的铁死亡,并且它还可上调铁转运蛋白,增加细胞内游离铁(Fe²⁺)的水平以促进Fenton反应,产生活性氧(ROS)以诱发铁死亡。
 
成功案例:来自AbMole的LPS(脂多糖,Lipopolysaccharides,M9524)被实验人员用于处理HK2细胞(人肾小管上皮细胞),发现LPS处理的HK2细胞中,脂质过氧化水平和铁离子(Fe2+)含量均显著增加,说明LPS可引起HK2细胞的铁死亡。
 
图4. LPS(M9524)可引起HK2细胞的铁死亡[4]。
 
5. 其他功能 
内毒素耐受研究:低剂量LPS(脂多糖,Lipopolysaccharides)预处理可诱导细胞对后续高剂量LPS的耐受性(耐受机制与表观遗传修饰相关);
屏障功能研究:破坏上皮或内皮细胞紧密连接(如肠道或血脑屏障模型),研究通透性变化;
抑制剂筛选LPS(M9524)可用于测试抗炎试剂(如TLR4抑制剂、细胞因子拮抗剂)的效果。
 
AbMole多年来持续聚焦跟进抑制剂的最新动态,为全球科研客户提供高纯度、高生物活性的各类小分子抑制剂、激动剂和人源化单抗。
 
参考文献及鸣谢
[1] HU L Y, ZHUANG W T, CHEN M J, et al. EGFR Oncogenic Mutations in NSCLC Impair Macrophage Phagocytosis and Mediate Innate Immune Evasion Through Up-Regulation of CD47 [J]. Journal of thoracic oncology : official publication of the International Association for the Study of Lung Cancer, 2024, 19(8): 1186-200.
[2] XU H, GAN C, XIANG Z, et al. Targeting the TNF-α-TNFR interaction with EGCG to block NF-κB signaling in human synovial fibroblasts [J]. Biomedicine & pharmacotherapy Biomedecine & pharmacotherapie, 2023, 161: 114575.
[3] LOU Y, HUANG Z, WU H, et al. Tranilast attenuates lipopolysaccharide‑induced lung injury via the CXCR4/JAK2/STAT3 signaling pathway [J]. Molecular medicine reports, 2022, 26(1).
[4] XU S, LUO J, WANG Y, et al. Fatty Acid Binding Protein-4 Silencing Inhibits Ferroptosis to Alleviate Lipopolysaccharide-induced Injury of Renal Tubular Epithelial Cells by Blocking Janus Kinase 2/Signal Transducer and Activator of Transcription 3 Signaling [J]. Journal of physiological investigation, 2024, 67(1): 47-56
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