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新型成像技术快速解析细胞分布与肿瘤异质性

2025-11-07     来源:本站     点击次数:34

PRISM(Profiling of RNA In-situ through Single-round iMaging)是一种新型的高复用空间RNA成像技术,它通过颜色强度条形码策略,在传统荧光显微镜下实现单轮成像即可检测多达64种RNA转录本。该方法利用滚动圈扩增(RCA)和竞争性杂交原理,将荧光信号的强度分级与多通道光谱结合,克服了传统显微镜仅能分辨有限通道的瓶颈。PRISM技术无需复杂的流体学设备,整个工作流程可在一天内完成,显著降低了空间转录组学的技术门槛。研究团队在多个组织样本中验证了PRISM的实用性,包括小鼠胚胎发育图谱、人类肝癌微环境分析以及小鼠脑组织的3D成像,揭示了细胞类型分布、亚细胞RNA定位及肿瘤异质性等关键生物学信息。该技术的高通量、高分辨率和易用性,为生物医学研究提供了强有力的工具。

本研究的核心贡献者包括Tianyi Chang、Shihui Zhao、Kunyue Deng、Zhizhao Liao、Mingchuan Tang、Yanxi Zhu、Wuji Han、Chenxi Yu、Wenyi Fan、Mengcheng Jiang、Guanbo Wang、Dongfang Liu、Jirun Peng、Yuhong Pang、Peng Fei、Jianbin Wang、Chunhong Zheng和Yanyi Huang。研究成果以论文“High-plex spatial RNA imaging in one round with conventional microscopes using color-intensity barcodes”的形式,于2025年10月在《Nature Biotechnology》上发表。

重要发现
01PRISM技术原理与工作流程
PRISM技术的核心在于通过颜色强度条形码对RNA转录本进行编码。每个靶基因的padlock探针包含多个片段,每个片段对应一个荧光通道(如Texas Red、Alexa Fluor 488、Cy5、Cy3),并通过混合标记与未标记成像探针的比例,实现荧光强度的分级量化。这种设计使得在有限的光谱通道内(如3-4个通道),通过强度组合可产生大量可区分的条形码。例如,将三个通道分为五级强度(0-4/5),并结合第四个通道的双级强度,理论编码容量可达64种基因。关键创新是半径向量过滤策略,确保条形码在颜色空间中的角度分散,避免因扩增产物大小不均导致的信号混淆。

工作流程从padlock探针与靶RNA结合开始,经过连接和滚动圈扩增,产生大量相同的条形码序列。随后,通过单轮混合成像探针染色,利用竞争性杂交使每个片段按预设比例显示荧光强度。成像后,信号点被提取并投影到颜色空间,通过高斯拟合或手动边界划分进行条形码解码。该方法在传统显微镜下即可实现,无需多轮反应,减少了样本变形和配准误差。实验验证显示,PRISM的解码准确率超过95%,且对组织自发荧光有良好鲁棒性。

02实验验证与多组织应用
PRISM技术在小鼠脑组织、胚胎和人类肝癌样本中进行了广泛验证。在小鼠脑冠状切片中,使用30个基因 panel,PRISM成功识别了71,435个细胞,包括兴奋性神经元、抑制性神经元、少突胶质细胞、星形胶质细胞和小胶质细胞等类型,并揭示了脑区的精细结构。

在小鼠胚胎发育研究中,PRISM生成了E12.5至E14.5阶段的3D细胞图谱,涵盖了超过425万个细胞,分为12种主要类型。研究揭示了神经系统、呼吸系统、运动系统和消化系统等器官的发育动态,例如脊髓中Hoxb8、Robo2和Stmn2基因的共表达,以及肢体发育中Wnt5a+和Tbx5+细胞的空间相关性。细胞互作分析显示,肝细胞中94%存在近距离相互作用,表明胚胎期肝小叶结构的早期形成。

在人类肝癌样本中,PRISM使用31个基因 panel(包括HBV核心蛋白编码序列),分析了约120万个细胞,识别出32种细胞类型,如肿瘤细胞、癌症相关成纤维细胞(CAFs)和免疫细胞亚型。空间分析揭示了肿瘤微环境的异质性,例如CAFs形成物理屏障阻碍免疫细胞浸润,以及B细胞在3D空间中形成淋巴样网络。这些发现为肝癌免疫治疗提供了新见解。

033D成像与亚细胞分析
PRISM技术兼容厚组织3D成像,在小鼠100微米厚脑切片中,通过折射率匹配和脂质去除步骤,实现了皮层、下丘脑、丘脑和海马体等区域的大规模RNA profiling。细胞分割和分类显示,PRISM数据与单细胞转录组数据高度相关。亚细胞分析揭示了RNA极性分布和核内富集异质性,例如下丘脑中Pmch+细胞呈现明显RNA极性,而海马体少突胶质细胞显示更高核RNA富集。这些结果为细胞状态研究增添了新维度。

创新与亮点
PRISM技术的核心创新在于突破了传统光学成像的多路复用限制。常规荧光显微镜受限于光谱重叠,通常只能分辨4-5个通道,而PRISM通过颜色强度分级,将编码容量提升至64重,无需超分辨率或专用设备。这种“单轮成像”策略避免了多轮标记-剥离反应带来的样本损伤和配准难题,显著提高了实验效率和可重复性。此外,PRISM采用半径向量过滤优化条形码区分度,并通过调整荧光探针比例适应不同光学系统,展现了高度的灵活性和鲁棒性。

在生物医学价值方面,PRISM降低了空间转录组学的技术门槛,使普通实验室也能开展高通量空间RNA分析。它成功应用于胚胎发育、肿瘤微环境和神经科学等多个领域,提供了细胞互作、亚细胞定位和3D结构的全新见解。例如,在肝癌研究中,PRISM揭示了CAFs的屏障作用和免疫细胞空间异质性,为精准医疗提供了潜在靶点。技术开源性进一步促进了广泛采用,有望推动分子病理学和细胞图谱构建的普及。

总结与展望
PRISM技术通过颜色强度条形码实现了高效、易用的空间RNA成像,为生物医学研究提供了强大工具。它克服了传统显微镜的通道限制,并在多种组织类型中验证了其可靠性和广泛应用潜力。未来,PRISM可通过结合光激活染料或膨胀显微镜进一步提升复用能力和分辨率。虽然目前灵敏度较低(约10%),但通过增加靶基因探针数量有望改善。随着技术优化和社区推广,PRISM有望成为空间生物学的基础技术,推动疾病机制研究和临床诊断创新。

论文信息
声明:本文仅用作学术目的。
Chang T, Zhao S, Deng K, Liao Z, Tang M, Zhu Y, Han W, Yu C, Fan W, Jiang M, Wang G, Liu D, Peng J, Pang Y, Fei P, Wang J, Zheng C, Huang Y. High-plex spatial RNA imaging in one round with conventional microscopes using color-intensity barcodes. Nat Biotechnol. 2025 Oct 30.

DOI:10.1038/s41587-025-02883-7.

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