本研究创新性地将胰腺胰岛移植至小鼠大脑硬脑膜上,建立了一个可在清醒状态下进行长期活体显微成像的平台。该技术通过颅窗结合气垫浮动式固定系统,实现了对光学难以触及组织的纵向在体观测,为研究内分泌组织的生理功能提供了突破性工具。研究团队成功在单细胞分辨率下记录了胰岛β细胞在葡萄糖刺激下的钙离子动态变化,揭示了麻醉剂对细胞信号传导的干扰效应,为糖尿病研究提供了更接近生理状态的观测模型。
本研究由Philip Troster、Montse Visa、Ismael Valladolid-Acebes、Martin Kohler及Per-Olof Berggren共同完成,成果以《Stable intracranial imaging of dura mater-engrafted pancreatic islet cells in awake mice》为题,于2025年11月在《Nature Communications》期刊正式发表。
重要发现
01硬脑膜移植模型的建立与验证
研究团队通过精细的颅窗手术将表达GCaMP3钙指示剂的胰岛细胞移植至小鼠硬脑膜表面,利用玻璃盖片密封与牙科水泥固定技术,结合金属头架实现机械稳定性。这一设计使得在Mobile HomeCage系统中对清醒小鼠进行长达90分钟的高稳定性成像成为可能。移植后3周内,通过监测肿瘤坏死因子-α、干扰素-γ和C反应蛋白等炎症指标,证实移植过程未引发显著免疫反应,为长期观测奠定了基础。
创新与亮点
01突破光学成像的生理屏障
本研究最突出的技术突破在于彻底摆脱了活体成像对麻醉剂的依赖。传统显微成像技术因麻醉剂对心血管系统和神经活动的抑制,难以反映真实生理状态。通过Mobile HomeCage系统的气垫悬浮设计,成功将头部固定带来的机械振动降至最低,实现了在自由活动动物体内进行亚细胞级分辨率的稳定观测。该平台支持连续数月的纵向研究,为慢性疾病进程的动态监测提供了可能。
03在生物医学领域的应用价值
该技术为糖尿病研究提供了前所未有的在体观测窗口,使得科学家能够直接观察胰岛β细胞在生理条件下的信号网络协调机制。对麻醉剂干扰效应的量化分析,为临床麻醉方案选择提供了实验依据。此外,硬脑膜作为免疫豁免部位的特征,使得跨物种移植(如人源胰岛移植)的长期研究成为可能,为细胞治疗评估开辟了新路径。该平台可扩展至其他微器官研究,有望推动内分泌学、神经科学和肿瘤学等多个领域的活体成像技术革新。
总结与展望
本研究通过将硬脑膜开发为微器官移植与成像新位点,成功建立了清醒动物体内高稳定性光学观测范式。技术核心在于巧妙结合颅窗手术与浮动式固定系统,攻克了活体成像中机械稳定性与生理真实性难以兼得的长期难题。实验数据不仅揭示了胰岛β细胞钙振荡的葡萄糖依赖性调控规律,更定量解析了不同麻醉剂对细胞功能的干扰程度,为代谢研究提供了更可靠的实验模型。从技术发展视角看,该平台为超分辨显微技术(如STED、STORM)在活体中的应用铺平了道路,未来有望实现对胰岛素囊泡转运、细胞器互作等亚细胞过程的动态解析。尽管当前研究聚焦于胰岛功能,但其技术框架可平行移植至其他领域——例如通过标记特定神经元群体,或可探索大脑皮层对外周代谢的实时调控机制;而血管通透性量化方法则可为血脑屏障研究提供新工具。随着多光子成像、光片显微等先进技术的引入,这一平台有望成为连接细胞生物学与整体生理学的重要桥梁,推动生物医学研究向更高时空精度迈进。
DOI:10.1038/s41467-025-66057-4.