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Ramos细胞培养保姆级SOP及注意事项

2026-10-20     来源:本站     点击次数:33

Ramos细胞源自人伯基特淋巴瘤(Burkitt's lymphoma)B 淋巴细胞,EBV阴性,悬浮生长,是B细胞信号转导、细胞凋亡及免疫球蛋白相关机制研究的常用模型。作为悬浮细胞,培养过程中不需胰酶,可通过离心收集细胞后,按合适比例稀释接种传代。

一、细胞复苏

1.【准备工作】水浴锅提前预热至37℃;准备含10%FBS的完全培养基:RPMI-1640(abs9484-500mL/SV30306.01)+10%FBS(abs972-500mL/SV30302.03)+1%P/S(abs9244-100ml/SV30010),取9mL完全培养基于37℃预热;安全柜紫外30min。

2.【融化】从液氮/冰箱取出冻存管,37℃水浴快速摇晃融化,约1-2min。

3.【重悬】75%酒精擦拭冻存管外壁,安全柜内开盖,将细胞悬液沿管壁缓慢滴入含9mL预热完全培养基的离心管,轻柔混匀(悬浮细胞勿吹打)。

4.【离心】300×g离心5-10min,弃上清,去除DMSO。

5.【重悬】加入完全培养基轻轻重悬(禁止吹打,避免机械损伤),接种T25瓶(4-6mL),轻摇混匀,标注信息。

6.【培养】放入37℃、5%CO2培养箱;24-48h观察细胞密度与活率。

二、细胞传代

1.【实验准备】配制完全培养基:RPMI-1640(abs9484-500mL/SV30306.01)+10%FBS(abs972-500mL/SV30302.03)+1%P/S(abs9244-100ml/SV30010)。提前取出PBS(abs962-500ml/SV30305.01)、完全培养基,恢复至室温;生物安全柜提前使用紫外照射30min。

注意:Ramos为悬浮细胞,传代无需胰酶,靠离心收集后按比例稀释接种。

2.【镜检】细胞处于对数期(密度约2-4×10⁵个/mL)、活率>90%时准备传代;密度过大(>1×10⁶个/mL)会导致细胞活力下降、发生细胞凋亡。

3.【细胞收集】将细胞悬液转入离心管,300×g离心5-10min,弃上清。

4.【细胞重悬】加入完全培养基轻柔重悬(禁止吹打,以免气泡损伤悬浮细胞)。

5.【传代】按1:4-1:10接种至新瓶,补加完全培养基至工作体积,轻摇混匀,标注信息。

6.【镜检】镜下确认细胞单个悬浮、无结团,放入37℃、5%CO2培养箱,2-3天观察。

注意:悬浮细胞严禁胰酶消化;收集后轻柔重悬,吹打产生气泡会损伤细胞;Ramos 增殖快,每2-3天传代,维持对数期密度。

三、细胞冻存

1.【准备工作】冻存液:无血清细胞冻存液(abs9417-100mL)或90% FBS(货号:abs972-500mL/SV30302.03)+10% DMSO(abs9187-100mL);冻存管标注信息;安全柜紫外30min。

2.【细胞收集】取对数期细胞,300×g离心5-10min,弃上清。

3.【细胞重悬】加入冻存液(约1mL/管)轻柔重悬,细胞密度约2-5×10⁶个/mL。

4.【冻存】每管1mL入冻存盒,-80℃过夜后转液氮长期保存。

四、关键注意事项

1、悬浮特性

(1)无酶收集,离心后稀释接种;

(2)轻柔重悬,禁止吹打;

(3)维持对数期密度,避免过密。

2、传代比例与密度

(1)分裂比1:4-1:10,每2-3天;

(2)建议密度2-10×10⁵个/mL,过高易细胞凋亡。

3、形态与污染判断

(1)正常:圆球形、单个悬浮、透亮;

(2)异常:成团、碎片增多、培养基浑浊(污染/支原体)。

参考资料

ATCC

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