磁珠进行核酸片段筛选的步骤基于
SPRI技术和磁场分离原理,通过磁珠与DNA片段的特异性结合实现目标片段的分离。以下是具体操作流程及关键要点:
一、实验准备
- 磁珠平衡
将磁珠从冰箱取出,室温平衡至少30分钟,避免低温破坏表面修饰基团。
- 试剂配制
- 现用现配80%无水乙醇(体积比8:2)。
- 根据目标片段大小选择磁珠比例(参考各厂家磁珠分选比例表)。
二、双轮分选法(适用于NGS文库构建)
第一轮:去除大片段(右侧清除)
- 磁珠与样本混合
按比例(如0.8×)加入磁珠至DNA溶液中,涡旋混匀或移液器吹打10次,室温孵育5分钟。
- 磁场分离
短暂离心后置于磁力架(如达远辰光磁力架),待溶液澄清(约5分钟),转移上清至新管,残留2μL液体于原管底部,避免吸到磁珠。
第二轮:去除小片段(左侧清除)
- 加入第二轮磁珠
按比例(如0.2×)加入磁珠至第一轮上清中,重复混匀、孵育步骤。
- 磁场分离与洗脱
- 分离后弃上清,用80%乙醇漂洗磁珠2次(每次30秒)。
- 室温干燥磁珠至刚出现龟裂(约5分钟),避免过度干燥。
- 加入ddH₂O或TE洗脱DNA,室温孵育5分钟后回收上清。
三、单侧分选法(适用于去除短片段)
- 调整磁珠比例
根据目标片段长度选择磁珠用量(如去除≥1000bp片段用0.6×,去除≥200bp用2.0×)。
- 结合与分离
- 混匀磁珠与样本后孵育5分钟,磁力架分离并弃上清。
- 乙醇漂洗后洗脱DNA,适用于去除引物二聚体或短片段杂质。
四、关键注意事项
- 分选精度控制
- 第一轮弃磁珠,第二轮弃上清,确保目标片段被保留。
- 使用Qsep、Agilent 2100 Bioanalyzer验证分选后片段分布。
- 操作误差规避
- 转移上清时使用200μL+10μL枪头,防止吸到磁珠。
- 初始体积≥100μL,不足时补超纯水以减少移液误差。
五、应用场景示例
- NGS文库构建:通过双轮分选获得300-500bp目标片段。
- 病原体检测:快速分离特定长度的病毒核酸片段。
如需具体磁珠比例表或实验参数,可参考厂商提供的说明书(如UltraBio™ II DNA磁珠分选指南)。