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双光子探针在生物医学成像领域的创新应用

2025-05-15     来源:本站     点击次数:132

在生物医学研究的微观世界里,成像技术无疑是科学家们洞察生命奥秘的“眼睛”。从早期的光学显微镜到如今的前沿成像手段,每一次技术的跃迁都为我们揭开了生命活动更精细、更深层的面纱。光子显微镜(TPM)作为新一代的成像利器,以其独特的物理原理和卓越的性能,在生物医学领域掀起了一场成像革命。光子显微镜采用近红外光子作为激发源,利用两个低能光子同时被吸收来激发荧光分子,这一过程具有空间局域性,能够实现高分辨率的三维成像,同时减少光漂白和光毒性,为活体组织的长期观察提供了可能。

研究背景与技术挑战
光学成像技术的局限性
光学成像技术在生命科学研究中扮演着举足轻重的角色。传统的共聚焦显微镜虽能实现细胞水平的荧光成像,却受限于紫外-可见光(UV-Vis)单光子激发方式。这种激发模式下,光子穿透组织深度有限,易受组织自身荧光干扰,且连续激光易造成光漂白和光毒性,损害生物样本。这些局限性严重制约了科学家们对生物体内深处结构和动态过程的观察。

双光子显微镜的优势与潜力
光子显微镜应运而生,它采用近红外光(NIR,700-1100nm)的两个低能光子作为激发源。该技术优势显著:一是近红外光子穿透力强,可深入组织内部,突破传统成像深度极限,实现对活体组织深层次结构的成像;二是光子激发具有空间局域性,可实现三维成像,提升分辨率,减少背景干扰;三是飞秒脉冲激光总能量低,有效降低光漂白和光毒性,有利于对活细胞和组织的长期观察。这些优势使光子显微镜在神经科学、细胞生物学、发育生物学等多个领域展现出巨大潜力。

高效探针研发的瓶颈
然而,目前双光子探针的研发仍面临诸多挑战。理想的探针需具备高选择性、良好水溶性、细胞通透性、大双光子作用截面、高光稳定性及低毒性等特性,以满足多样化的生物医学需求。探针是双光子显微镜成像的关键,它直接决定了成像的特异性和灵敏度。但兼具这些性能的探针研发难度极大,这在很大程度上限制了双光子显微镜的广泛应用。现有探针在生物靶点的选择性、成像深度、信号强度等方面仍存在不足,难以满足复杂生物环境下的高精度成像需求。

技术创新与应用
脂筏成像探针的突破
为攻克探针研发难题,科研团队展开深入研究。在脂筏成像方面,针对传统探针在细胞中表现不佳的问题,研究人员开发出C-laurdan(CL)。这一改进显著提升了探针水溶性,使其在不同类型脂质环境中均能精准反映脂筏和非脂筏区域,克服了传统探针的局限性。CL在细胞膜中展现出良好的平行排列,其荧光发射峰在不同脂质环境中的变化与脂筏的物理状态高度相关,为脂筏的可视化提供了可靠工具。实验结果表明,CL标记的细胞在经过处理破坏脂筏后,其GP曲线发生显著变化,高GP值部分明显下降,而低GP值部分保持稳定,这一结果与脂筏破坏引起的细胞膜物理性质改变高度一致,确证了CL对脂筏的精准标识能力。

进一步地,团队又研发了CL2和SL2双光子开启探针。CL2在脂筏中特异性发射荧光,成像背景清晰。实验显示,CL2标记的巨噬细胞在MβCD处理后荧光信号消失,而补充胆固醇又可使其恢复,且与商业脂筏探针成像结果高度吻合。SL2则凭借磺酸基团的亲水性,减少细胞内摄取,更适用于长期成像。SL2在293T细胞和新鲜大鼠海马脑片成像中,展现出对细胞膜脂筏的清晰标记,且细胞内摄取极少,为活体组织脂筏研究提供了可靠手段。SL2标记的大鼠海马脑片TPM图像清晰地展现了CA1和CA3区域以及齿状回的脂筏分布,即使在约100μm的深度,仍能分辨出细胞膜上的亮区,这些亮区在MβCD处理后消失,进一步验证了SL2对脂筏的特异性。

细胞器成像探针的创新
在细胞器成像领域,团队开发出针对溶酶体和线粒体的光子探针。用于溶酶体的两种探针CLT-blue和CLT-yellow,以及分别针对线粒体和溶酶体的BLT-blue和FMT-green探针,均展现出优异的成像性能。这些探针发射波长不同,可实现双色成像,同时具备高光稳定性、低细胞毒性和抗pH变化的特性。两种探针的发射峰分别为470nm和550nm,双光子作用截面分别为50GM和47GM,能够在较低激光功率下产生明亮的荧光信号。实验中,这两种探针标记的HeLa细胞,其TPM图像与溶酶体的光学成像结果高度重合,而与高尔基体和线粒体无重叠,证明了其对溶酶体的特异性标记能力。

两种探针的双光子作用截面分别为160GM和175GM,具有较高的亮度和稳定性。在RAW264.7细胞中,这两种探针分别对线粒体和溶酶体进行标记,TPM图像与光学成像结果一致,且在生物相关pH范围内不敏感,可长期稳定成像。实验结果显示,在饥饿处理2小时后,溶酶体和线粒体的共定位系数显著增加,这与自噬过程中线粒体被溶酶体降解的生物学机制高度吻合。

pH测量探针的开发
此外,针对胃食管反流病(GERD)等与pH变化相关的疾病诊断难题,团队研发出比率型双光子pH探针NP1。NP1在不同pH值下蓝绿荧光发射强度比值(Iblue/Igreen)发生显著变化,可实现组织内部pH值的精准测量。实验表明,NP1的Iblue/Igreen比值随pH值的降低而增加,覆盖pH2.45至6.50的广泛范围,且该比值与pH值呈良好的线性关系。动物实验与人体组织测试表明,NP1能有效区分正常组织与病变组织的pH差异。在对胃食管组织的成像中,NP1可以从90-180μm深度获取组织pH值,为GERD病理研究和非侵蚀性胃食管反流病(NERD)诊断提供了关键数据支持。

成像实验与结果分析
脂筏成像实验
SL2在293T细胞和新鲜大鼠海马脑片成像中,展现出对细胞膜脂筏的清晰标记,且细胞内摄取极少。SL2标记的大鼠海马脑片TPM图像清晰地展现了CA1和CA3区域以及齿状回的脂筏分布,即使在约100μm的深度,仍能分辨出细胞膜上的亮区,这些亮区在MβCD处理后消失,进一步验证了SL2对脂筏的特异性。这些实验结果表明,新型脂筏探针在细胞和组织水平上均能实现对脂筏的精准成像,为研究细胞膜的结构与功能提供了有力工具。

细胞器成像实验
对于细胞器成像,两种探针标记的HeLa细胞,其TPM图像与溶酶体的光学成像结果高度重合,而与高尔基体和线粒体无重叠。两种探针在RAW264.7细胞中成像效果与溶酶体和线粒体的光学成像结果一致。在自噬实验中,经雷帕霉素诱导自噬后,TPM图像显示溶酶体荧光增强、线粒体荧光减弱,且二者融合程度随时间增加。这一过程直观展现了自噬过程中线粒体被溶酶体降解的动态过程。在组织成像中,这两种探针在120μm深度处仍能清晰分辨溶酶体和线粒体分布,TPM图像显示二者在组织中的分布特征与预期一致,且在不同区域的分布差异也能被清晰捕捉,为研究细胞器在组织中的相互作用和功能提供了重要依据。

pH测量实验
NP1探针在人体胃食管组织成像中表现出色,可从90-180μm深度获取组织pH值。实验测得胃部pH值约为2.1,正常与食管炎患者的胃部pH值接近,但在胃食管连接处和食管下括约肌上方5cm处,食管炎患者的pH值显著低于对照组。这一结果与GERD的病理特征相符,即食管腔内酸性环境增强是GERD发病的关键因素。此外,NP1探针对不同深度组织的pH测量结果显示,尽管组织纹理略有变化,但pH值测量结果稳定,表明该探针在组织内部具有良好的渗透性和稳定性,能够提供准确的pH值信息。这些实验数据为GERD的病理研究和NERD的诊断提供了重要依据,也为未来开发基于双光子探针的临床诊断技术奠定了基础。

总结与展望
双光子探针的技术革新,标志着生物医学成像从“结构观察”迈向“功能解析”的新阶段。通过分子设计优化,CL、SL2等探针成功克服了传统工具的灵敏度与特异性瓶颈,而双色系统则为细胞器互作研究提供了动态窗口。NP1的临床验证更是证明,双光子技术有望从实验室走向病床,成为疾病早期诊断的有力工具。随着探针库的扩充与成像系统的微型化,双光子技术或将在肿瘤免疫治疗、神经环路解析及个性化医疗中发挥更核心的作用。

论文信息
声明:本文仅用作学术目的。
Lim CS, Cho BR. Two-photon probes for biomedical applications. BMB Rep. 2013 Apr;46(4):188-94.
DOI:10.5483/bmbrep.2013.46.4.045.
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