在生命科学领域,理解细胞分子结构的纳米级细节对揭示宏观生物功能至关重要。然而,传统成像技术如免疫荧光或质谱成像的空间分辨率受限,难以捕捉蛋白质相互作用的分子尺度信息。尽管超分辨显微镜技术如STORM或DNA-PAINT已实现纳米级分辨率,但其多靶标成像能力受限于荧光标记通道数目和成像速度。本文介绍了一项结合速度优化的右旋DNA与左旋DNA(镜像序列)的成像新策略,实现了高效12重超分辨成像。该方法通过简化标记流程,在单蛋白分辨率下对复杂神经元互作网络进行三维测绘,仅需10小时即可完成200×200微米的大视野成像,将传统需数周的实验压缩至一天内完成。
本研究成果由Eduard M. Unterauer、Eva-Maria Schentarra、Isabelle Pachmayr、Taisha Tashrin等共同主导,题为《Left-handed DNA for efficient highly multiplexed imaging at single-protein resolution》,于2025年10月《Nature Communications》正式发表。
重要发现
01左旋DNA-PAINT技术原理与序列优化
研究团队基于右旋DNA-PAINT的速度优化序列(R1-R6),设计并合成了其镜像版本——左旋DNA序列(L1-L6)。这两种序列在结构和化学性质上互为镜像,但具有相同的杂交特异性。通过将6条右旋和6条左旋序列组合,构建出12通道正交探针库,可直接用于Exchange-PAINT工作流程,无需引入次级标记或链置换反应。这种设计显著降低了实验复杂度,避免了对瞬态DNA条形码的依赖,使非专业用户也能轻松实现高性能多重成像。
在细胞环境中,团队选取核孔蛋白Nup96、线粒体外膜蛋白Tom20和微管蛋白α-Tubulin作为超分辨成像基准标志物。通过3D成像,不仅分辨出核孔复合体中相距约13纳米的单个Nup96蛋白,还清晰呈现了线粒体膜上Tom20的分布以及直径约30纳米的微管纤维结构。
03结合动力学表征该图谱首次在单蛋白分辨率下揭示了兴奋性突触(Bassoon、PSD95、VGlut1)与抑制性突触(Bassoon、Gephyrin、VGAT)的分子组成,并发现了一种新型混合突触(Gephyrin与VGlut1共定位)。此外,研究还观察到过氧化物酶体(Pmp70)与高尔基体(Golga5)间的潜在膜接触位点,为细胞器间通讯研究提供了新线索。通过三维渲染,清晰展示了βII-血影蛋白的环状结构、神经纤维丝的分布以及线粒体在轴突和树突中的形态多样性。
创新与亮点
01突破多重成像的速度瓶颈
本研究最大创新点在于将左旋DNA序列引入速度优化DNA-PAINT框架,解决了高阶多重超分辨成像中速度与复杂度难以兼顾的难题。传统多重成像需依赖有限的光谱通道或耗时的探针交换流程,而左-右旋DNA组合将可用序列空间扩展一倍,在不增加光学硬件负担的前提下实现12重并行检测。其成像速度较常规Exchange-PAINT提升两个数量级,使大视野纳米级空间蛋白质组学分析进入“小时级”时代。
总结与展望
左旋DNA-PAINT技术通过巧妙利用镜像核酸化学,成功打破了超分辨多重成像在通量、速度与易用性之间的平衡瓶颈。其能够在单蛋白分辨率下,以小时级耗时完成复杂
细胞系统的多靶标测绘,为空间蛋白质组学研究树立了新标杆。未来,该技术可与肽段-PAINT、扩增标记等策略进一步结合,将 multiplexing 能力提升至数十甚至上百种靶标。随着更多针对疾病标志物的亲和试剂的开发,这一方法有望在精准医疗领域发挥重要作用,例如用于病理切片中稀有生物标志物的定量分析或药物靶点分布的纳米级评估。尽管技术在标记效率、三维成像深度方面仍有优化空间,但其无疑为生命科学研究者提供了一把解锁细胞纳米世界的钥匙。
DOI:10.1038/s41467-025-64228-x.