癌症是人类健康面临的重要难题,其中一个重要原因是肿瘤细胞的耐药性。而耐药性很大程度上是癌症异质性引起的,即细胞基因突变产生众多肿瘤细胞亚群,这些细胞亚群拥有多样化的突变谱及强大的持续增殖和突变能力,因此表现为癌症治疗过程中各种各样的耐药现象。
为了研究肿瘤耐药机制,需要建立有效的实验模型。目前动物或者人类患者的宏观模型,最接近真实情况,但外在影响因素较多且难以把控,很难明确真正的效率、作用机理和因果关系。因此,建立一种有效的微观模型势在必行。
本文来自阿姆斯特丹大学,于2023年发表在《scientific reports》杂志。该团队建立了一套新的分析贴壁 2D 细胞培养物和 3D 类器官培养物中的克隆群体动态的方法。在未来有望用于肿瘤细胞亚群分化等方面的研究。
01、实验方法:
1. 标记细胞:将目标细胞系用慢病毒本体荧光标签(lentiviral gene ontology (LeGO))标记。为了确保标签定位在细胞核中,利用基因编辑技术将这些标签与组蛋白H2B或核定位信号NLS融合。实验中用到四个细胞系,即结直肠癌细胞系RKO和LS180、人骨肉瘤上皮细胞系U2OS和人表皮角质形成细胞系HACAT。
2. 生成多克隆群落:使用德国Biofluidix公司的非接触式压电式皮升级点样分液喷头SiJet,将细胞悬液喷点在预填充0.5%琼脂糖的24孔细胞培养板/类器官培养装置中(琼脂糖防止细胞液滴蒸发,同时防止细胞在贴壁过程中因布朗运动或微电流产生移动)。待细胞完全贴壁后,更换为常规培养基。通过控制点样分液喷头SiJet每次喷出的液体体积,保证每个细胞群落有2-10个荧光标记细胞,但因LeGO-NLS标签是随机的,因此每个群落的细胞组合颜色不尽相同 (图1,a)
图1 贴壁细胞群落制备(a)实验流程,荧光标记细胞系制备→用SiJet皮升级分液器分液制备细胞群落→不同时间段拍摄照片,采集数据(b) SiJet皮升细胞群落制备对细胞存活率的影响:control组中的每个数据点代表至少 10 个细胞的平均存活率; SiJet组中,每个数据点代表一个细胞群落
3. 图像分析:不同时间点荧光显微镜采集细胞群落图像,统计并分析细胞的数目、存活率等指标。
02、实验结果:
1. 与常规方法制备的细胞群落相比,SiJet点样喷头制备的细胞群落,通过后期优化实验或算法消除,其细胞存活率较高没有受到喷头机械性的影响(图1,b)
2. 不同的细胞群落有完全不同的细胞克隆生长速度,标准差(代表细胞克隆大小异质性)也与群落生长速度相关。此外,细胞克隆组成动力学也会随着时间而变化,会导致显性克隆出现以及其他克隆的减少或消失。(图2)
图2 克隆生长动力学(a) 在指定时间点选定菌落的代表性图像,比例尺:200μm; (b)指定细胞系菌落的相对生长。每个数据点表示实验第 6 天单个菌落中的细胞数相对于实验第一天细胞数的倍数;(c) (b)中细胞克隆大小的标准偏差,代表克隆生长的异质性;(d)选定的单个克隆中可视化大小随时间的变化。同心圆代表时间,最早的时间点绘制在每个图的核心
3. 不同克隆群体的 Herfindahl-Hirschman (H-H) 指数结果证明:用SiJet皮升级点样喷头制备皮升细胞群落,追踪二维菌落的各种克隆特性方面的可行性,揭示了所选四种癌细胞系的克隆动力学差异。
4. 用SiJet点样喷头制备的类器官与常规方法培养的类器官在活力、细胞生存率等方面并没有显著差异,可作为现有类器官研究的替代方法。
03、结论
SiJet点样喷头制备的细胞群落和类器官,具有体系小,存活率高,通量高,初始仅有数个单或多克隆细胞,可对各类细胞实验的条件进行精准控制,成为未来开展肿瘤细胞亚群研究的一个潜在方法。
全文链接:
https://doi.org/10.1038/s41598-023-42849-w
Biofluidix成立于2005年,位于德国,技术源自德国弗莱堡大学微量系统工程学院。
* 专注非接触式的精准纳升和皮升的超微量点样和分液;
* 点样喷头可第三方自动化整合;
* 提供微量分液、芯片点样设备与定制化服务
* 用于微孔板微量移液、微流控快检芯片、生物传感器芯片、电化学芯片、光电芯片以及微阵列生物芯片,包括:核酸芯片,基因芯片,蛋白芯片,多肽芯片、多糖芯片、小分子化合物芯片、细胞芯片。