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旋转斜入射干涉散射成像(RO-iSCAT)技术介绍

2026-05-18     来源:本站     点击次数:227

细胞膜会形成多种管状突起,参与细胞感知、运动、吞噬及细胞间通讯。传统显微技术在观测这些纳米尺度、三维动态的管状结构时存在局限:共聚焦荧光轴向分辨率不足,光毒性影响活细胞长时程观测;电子显微镜需固定样本,无法捕捉动态过程。针对上述问题,本研究提出旋转斜入射干涉散射成像(RO-iSCAT)技术,利用斜照明产生的焦平面内外信号空间编码差异,通过方位角旋转积分消除散斑噪声,实现无标记、低光毒性的管状膜突起三维时空动态实时追踪。

该研究由Junyu Liu、Yean Jin Lim、David Herrmann、Paul Timpson、Tri Giang Phan、Viviane Delghingaro-Augusto、Christopher Richard Parish、Huafeng Liu、Min Guo 与通讯作者 Woeiming Lee 等完成,论文题为 "Using rotational integration of oblique interferometric scattering to track axial spatiotemporal responses of tubularmembrane protrusions",于2026年5月在线发表于nature Communications。

重要发现
01旋转积分消除散斑的物理机制
干涉散射显微镜(iSCAT)利用样品散射光与参考光的干涉实现纳米尺度成像,对轴向位移敏感,但易受散斑噪声干扰。传统方法需采集背景图像进行减法处理,在活细胞观测中因样本漂移导致效果不佳。本研究发现,斜入射照明下,离焦iSCAT信号相比焦平面信号产生更大的横向位移,且位移量与离焦程度正相关。基于此,研究采用振镜控制照明方位角从0°至360°连续旋转,相机同步积分多方位角图像。焦平面信号在各方位角下位置一致,积分后叠加增强;离焦散斑信号因横向位移互不相关,积分后被平均抑制。该方法无需背景减法,避免了动态范围损失。

数值模拟验证了这一机制:在-10μm至10μm离焦范围内,干涉条纹横向位移随离焦量单调增加,焦平面附近位移趋近于零。对不同方位角的离轴相位延迟与离焦相位延迟进行卷积,得到非线性相位差,映射为强度条纹平移。方位角积分后,离焦侧瓣显著降低,等效于共聚焦的离焦抑制效果,且无针孔光子损失。

02成像性能的实验验证
研究团队构建了RO-iSCAT系统,采用488nm激光、60×1.49nA油镜,振镜控制照明角度,相机与扫描同步。对比实验显示:传统iSCAT经背景减法后仍存在残余散斑;RO-iSCAT直接积分图像背景更均匀,可分辨相距约280nm的40nm金颗粒,超越阿贝衍射极限,源于大角度照明扩展了空间频率支持。

在活细胞体系中,癌相关成纤维细胞(CAF)培养加入40nm金纳米颗粒作为示踪物,RO-iSCAT清晰显示膜突起结构,而常规散射成像难以分辨。通过100nm聚苯乙烯球的轴向阶跃扫描,建立了干涉强度与轴向位移的正弦映射关系,实现纳米级位移定量。

03三维动态追踪应用
单囊泡内化过程:在人微血管内皮细胞观测中,RO-iSCAT记录到胞外囊泡从膜表面扩散(亮纹特征)到内吞(暗纹特征)的转变。基于100ms时间分辨率和轴向标定,获得150 s三维轨迹,划分为胞外扩散(平均速度1456nm/s)、膜摄取(572nm/s)和胞内受限运动(1064nm/s)三个阶段。纯散射成像仅能提供二维轨迹,丢失轴向信息。

细胞间膜桥形成:在表达LifeAct-GFP的胰腺癌细胞(KPC)中,对比HiLo荧光、暗场旋转相干散射(ROCS)和RO-iSCAT。结果显示:HiLo荧光在接触初期难以检测膜结构;ROCS仅见微弱散射信号;RO-iSCAT在早期即识别出两根相距约240nm的相邻管状突起,并追踪到其合并为单一膜桥的过程,条纹周期变化反映了突起的扭转动态。

光毒性评估:对持续激光照明20小时的细胞样本分析表明,低GFP表达区(Fl-)细胞形态和运动性保持正常,高GFP表达区(Fl+)细胞活性下降。统计显示,激光照明组与对照组在22小时后的细胞汇合度无显著差异(p>0.05),证实光毒性主要来自荧光标记的光吸收,而非RO-iSCAT照明本身,支持其长时程活细胞成像能力。

04管状膜突起的无标记分类
RO-iSCAT的干涉条纹特征可用于区分三类管状膜突起:
Trail(膜拖痕):贴附于玻璃基底,高度均匀,条纹强度稳定;
Tether(拴绳样突起):从细胞顶面斜向延伸至基底,高度梯度大,条纹呈1μm间隔的明暗交替;
Bridge(细胞间膜桥):连接两个细胞,悬浮于基底上方,条纹周期约6μm,轴向变动显著。

统计六类细胞系(CAF、内皮细胞、胰岛β细胞、HMVEC、KPC、L929)显示,Tethers占比超50%,Bridges占比最低(部分条件下<1%)。通过轴向变动图(像素强度时间标准差转换为位移范围)量化动态差异:Bridge平均轴向位移138nm,为Tether(81nm)的1.7倍、Trail(59nm)的2.3倍,符合"两端固定绳索"的物理模型。

共培养实验进一步验证了该分类能力:在CAF-CAF和CAF-KPC体系中,RO-iSCAT追踪到独立膜突起逐步黏附、合并为膜桥的过程,轴向变动图显示桥形成过程中位移从85nm增至200nm以上,而HiLo荧光和ROCS均无法提供此类三维动态信息。

创新与亮点
RO-iSCAT的核心突破包括三点:通过旋转积分替代背景减法消除散斑,简化操作流程;利用斜照明几何实现内置离焦抑制,提升信噪比约10倍;基于干涉条纹特征对管状膜突起进行无标记分类。该技术整合了无标记成像、低光毒性和纳米级轴向灵敏度,解决了传统方法在活细胞三维动态观测中的局限。在肿瘤微环境、细胞间通讯等研究中,可提供长时程、高时空分辨率的动态数据,无需荧光标记即可区分不同功能的膜突起结构。

总结与展望
RO-iSCAT通过旋转斜入射积分策略,实现了无标记、低光毒性的管状膜突起三维时空追踪,信噪比提升约10倍,无需背景减法。未来可优化旋转扫描方式以提高帧率,引入计算像差校正扩大视场,结合微流控技术校准折射率差异以提升轴向定位精度,并开发自动化干涉图分析算法,实现膜突起的批量分类与量化。该技术有望成为研究细胞力学、细胞间通讯及疾病机制的重要工具。

论文信息
声明:本文仅用作学术目的。
Liu J, Lim YJ, Herrmann D, Timpson P, Phan TG, Delghingaro-Augusto V, Parish CR, Liu H, Guo M, Lee WM. Using rotational integration of oblique interferometric scattering to track axial spatiotemporal responses of tubular membrane protrusions. Nat Commun. 2026 May 14;17(1):4064.

DOI:10.1038/s41467-026-72302-1.

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