本文聚焦于N-甲基-D-天冬氨酸受体(NMDARs)在斑马鱼大脑血管发育中的调控作用。研究通过神经元与血管内皮尖端细胞(ETCs)之间的交互,揭示了神经活动如何通过NMDARs激活血管内皮生长因子(VEGF)的表达,进而促进ETCs的钙离子活动与生长,最终驱动大脑血管网络的形成。论文综合运用体内实时成像、遗传学操纵和光遗传学技术,为神经-血管通信机制提供了新的分子与细胞水平证据。
本研究的核心发现由Ting-Ting Liu、Hong-Yu Li、Shan-Ye Gu、Le Sun、Rong-Wei Zhang、Jia-Liang Zu、Yu Zhang、Shu-Guang Yu、Xiu-Dan Zheng、Jiang-An Yin、Qi Chen、Jie He、Bing Xu和Jiu-Lin Du共同完成。论文题为“NMDA receptors coordinate brain vascular development via neuron-to-endothelial tip cell crosstalk in zebrafish”,于2025年12月在线发表于《Nature Communications》。
重要发现
01NMDARs功能障碍损害大脑血管发育
研究首先通过药理学方法调控NMDARs活性,发现使用拮抗剂MK-801或D-AP5处理斑马鱼幼虫后,其中大脑血管的密度、总长度、分段数量及从脉络丛血管发出的血管段数均显著减少;而激动剂NMDA则能促进这些参数的增长。这一现象仅发生于大脑血管,躯干血管未受影响,表明NMDARs对大脑血管发育具有特异性作用。进一步通过遗传学手段(如grin1b基因突变或 Morpholino 敲低)验证了NMDARs缺失会导致血管形成缺陷,且神经元特异性(而非内皮细胞特异性)的NMDARs功能障碍是关键因素。实验中采用转基因斑马鱼系Tg(kdrl:eGFP)进行共聚焦显微镜三维成像,并结合自研软件Angiotome对血管网络进行定量分析,确保了数据的高精度与可重复性。
创新与亮点
本研究首要突破了活体环境中神经-血管交互实时观测的难题。传统方法难以同时捕捉神经活动与血管生长的动态关联,而论文通过结合共聚焦显微镜、钙成像与光遗传学,首次在斑马鱼模型中实现了对NMDARs-VEGF-Ca2+通路的全程可视化。例如,利用高分辨率时间序列成像直接观察到ETCs丝状伪足的延伸与钙活动的同步变化,为理解细胞级交互提供了直接证据。
在成像技术应用层面,研究创新性地将光遗传学刺激与局部药物喷注相结合,实现了对特定细胞信号的精准操控。例如,通过激光扫描光解NP-EGTA/Ca2+复合物诱导ETCs钙瞬变,或局部喷注VEGF验证其功能性作用,这些方法显著提升了实验的时空精度。此外,自研软件Angiotome的应用实现了血管网络的自动化定量分析,减少了人为误差,提升了数据可靠性。
在光学生物医疗领域,该研究具有明确的实际价值。首先,其揭示的NMDARs-VEGF机制为神经血管疾病(如脑卒中、神经退行性疾病)提供了新的治疗靶点;其次,所采用的活体成像技术方案可推广至其他模型(如哺乳动物),助力药物筛选与病理研究。例如,通过模拟神经活动异常导致的血管发育缺陷,可为早期诊断提供生物标志物。整体而言,本研究不仅深化了对神经-血管耦合的理解,也为光学成像技术在精准医疗中的应用树立了典范。总结与展望
本研究系统阐明了NMDARs通过调控神经元VEGF表达与ETCs钙活动,介导神经活动依赖性大脑血管发育的机制。论文通过多学科技术整合,强调了光学成像在揭示动态生物过程中的核心价值。未来工作可进一步探索该通路在哺乳动物模型中的保守性,以及其在病理条件下(如缺血或血脑屏障破坏)的调控作用。同时,结合更高时空分辨率的成像工具(如光片显微镜)有望实现单细胞水平的长期追踪,推动神经血管生物学向临床转化迈出关键一步。
DOI:10.1038/s41467-025-66543-9.