小编把大家高频提问的几个实操问题汇总起来,从Cre小鼠的构建方式、Reporter验证、意外表达的排查,到条件性基因敲除小鼠的繁育策略,逐一拆解,帮大家在实验设计阶段就把坑避掉。
1. Cre小鼠的建立方法对表达的影响——随机转基因 vs 定点敲入
早期构建Cre小鼠主要采用随机转基因技术——将带有外源特异性启动子的Cre基因序列随机整合到小鼠基因组的某个位置。但这类转基因小鼠存在两个先天缺陷:
· 整合位点不可控 由于整合位置随机,Cre重组酶的表达可能受染色体状态干扰。例如,DNA甲基化等表观遗传修饰可能导致Cre基因沉默,进而影响Cre重组酶的正常表达。
· 基因拷贝数不可控 多拷贝整合可能带来表达水平的批次间差异,影响实验可重复性。
因此,更可靠的方法是通过基因打靶(ES细胞或CRISPR/Cas9途径)将单拷贝Cre基因定点整合到内源基因座中。主要有两种策略:
· 取代型表达 Cre表达框直接插入到内源基因起始密码子前,替代原有基因的编码序列。
· 共表达型 将Cre表达框通过2A(自剪切多肽)或IRES(内部核糖体进入位点序列)元件敲入到小鼠内源基因的3'端,实现与内源基因的共表达。

图1. 取代型表达

写在最后
以上就是Cre-lox系统在实际使用中最常被问到的几个问题。从构建方式的选择、表达谱验证、意外表达的排查到繁育策略的设计,每一步都直接影响最终的实验结果。
南模生物拥有丰富的Cre工具小鼠资源库,涵盖多种组织特异性和诱导型Cre品系,配合完善的验证数据,可帮助科研人员快速匹配合适的基因敲除小鼠模型方案。如有需要,欢迎联系我们获取详细品系信息。
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References
[1]. Duffield JS, Humphreys BD. Origin of new cells in the adult kidney: results from genetic labeling techniques. Kidney Int. 2011 Mar;79(5):494-501. doi: 10.1038/ki.2010.338. Epub 2010 Sep 22. PMID: 20861816.
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