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Pipetty电动移液器在马流感RT-PCR实验中的应用

2026-03-20     来源:广州程淇生物     点击次数:55

Pipetty电动移液器在马流感RT-PCR实验中的应用
方案摘要:本方案结合了Pipetty电动移液器精准控量、连续移液、操作稳定、防交叉污染的核心优势,规范样品处理、RNA提取、反应体系配制等关键操作环节,规避手动移液易出现的误差、效率低下、污染风险等问题,充分发挥其移液精准度高、重复性强、操作便捷的特点,保障实验结果的准确性、一致性和可靠性,为马流感的快速、精准检测提供标准化操作依据,适用于动物疫病防控机构、兽医实验室等开展马流感核酸检测工作,助力提升检测工作的效率与质量。
 
 
 
 
方案详情:
一、实验原理
将马流感病毒(EIV)感染样品中的RNA提取后,利用一步法RT-PCR技术,通过逆转录酶将RNA逆转录为cDNA,再以cDNA为模板,借助特异性引物(HF、HR、MF、MR)进行PCR扩增,扩增产物经琼脂糖凝胶电泳分离后,通过凝胶成像系统观察特异性条带,根据条带大小及有无,判定样品中是否含有马流感病毒核酸,实现对马流感的快速检测。
 
 
 
二、实验准备
1、设配和材料
① Pipetty电动移液器MSIC01-03-20、MSIC01-03-250、MSIC01-03-1000;
② 低温台式高速离心机;
③ PCR仪;
④ 电泳仪;
⑤ 水平电泳槽;
⑥ 凝胶成像系统。
 
2、试剂和材料
① 病毒RNA提取试剂盒;
② 一步法RT-PCR试剂盒;
③ 琼脂糖;
④ 引物;
⑤ 阳性对照:EIV鸡胚/细胞培养物、EIV核酸标准样品/质控品、感染EIV的阳性组织样品、RT-PCR阳性对照质粒均可作为阳性对照;
⑥ 阴性对照(DEPC处理水);
⑦ 带有250bp和500bp分子质量的DNAMlarker(如:DL2000)。
 
 
三、实验步骤
1、将采集的拭子样品充分捻动、挤干后,使用Pipetty电动移液器MSIC01-03-1000移取200μL样品液,转入无菌离心管中,备用。
2、使用病毒RNA提取试剂盒,按试剂盒说明书步骤提取病毒RNA:借助Pipetty电动移液器,精准移取试剂盒中的裂解液、洗涤液等试剂,加入样品液中,充分混匀后经低温台式高速离心机离心处理;最后用移液器移取洗脱液,收集提取的病毒RNA。提取的病毒RNA应立即进行RT-PCR反应,若暂不反应,需置于-70°C冰箱保存。
3、将RT-PCR试剂盒中的所有试剂置冰上融化,充分混匀后备用;取n+2个PCR反应管(n为待检样品、阳性对照和阴性对照·数总和),将4种引物分别配制成10μmol/L的使用液。在25μL反应体系中,每种引物加1μL,按照表1所示比例,使用Pipetty连续分液模式,精准移取各试剂组分,依次加入PCR反应管中。
   
 
 
4、将加样后的PCR反应管按顺序放入PCR仪中,设置如下反应程序并启动反应:42°C反转录30min,94°C预变性2min,进行1个循环;94°C变性30s、53.6°C退火40s、72°C延伸40s,进行30个循环;72°C延伸10min,反应结束后取出PCR反应管。
注:反应体系和反应条件,可根据所使用RT-PCR试剂盒的说明书,适当调整各试剂用量及反应温度和时间。
  1. 配制1.5%琼脂糖凝胶,待凝胶凝固后,使用Pipetty分别移取5μL PCR产物和5μL DNA Marker,依次加入凝胶加样孔中,接通电泳仪电源,进行电泳;电泳结束后,将凝胶放入凝胶成像系统中,观察并记录扩增条带情况。
 
四、结果判定
1、结果成立条件
阳性对照扩增出596bp和224bp大小的两条片段;阴性对照没有特异性片段。
2、阳性
待检样品扩增出596bp和224 bp大小的两条片段,判定为H3亚型EIV核酸阳性。
3、阴性
待检样品无扩增产物,判定为H3亚型EIV核酸阴性。
4、疑似
待检样品仅扩增出一条224 bp片段判定为疑似EIV核酸阳性。再次RT-PCR检测后,如仍为一条224bp片段,则样品可能含有其他类型流感病毒,应进行病毒分离鉴定,或重新采样进行检测。
待检样品仅扩增出一条596 bp片段判定为疑似EIV核酸阳性。再次RT-PCR检测后,如仍为一条596bp片段,则样品可能污染,应重新采样进行检测。
 
 
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